Archiwa

Czytaj więcej

• badanie poziomu metabolitów fitozwiązków w płynach biologicznych i tkankach organizmów;
• analiza biomarkerów metabolizmu spożycia żywności pochodzenia roślinnego;
• badanie biodostępności składników żywności i wyznaczanie parametrów farmakokinetycznych;
• analiza metabolomu roślin;
• ilościowa i jakościowa analiza fitozwiązków.

Czytaj więcej

1. System gradientowy mikro-UHPLC z autosamplerem (LC200, Eksigent) sprzężony z spektrometrem masowym TripleTOF 5600+ (AB SCIEX, USA);
2. System gradientowy mikro-UHPLC z autosamplerem (LC200, Eksigent) sprzężony z spektrometrem masowym QTRAP 5500 (AB SCIEX, USA);
3. Systemy gradientowy HPLC z autosamplerem (LC-20) sprzężony z detektorem DAD SPD-M20A (Shimadzu, Japonia);
4. System gradientowy HPLC z autosamplerem (LC-10, Shimadzu, Japonia) sprzężony z detektorem DAD (SPD-M10AVP, Shimadzu, Japonia) i spektrometrem masowym (LCMS-QP8000a, Shimadzu, Japonia);
5. System gradientowy HPLC z autosamplerem (LC-10, Shimadzu, Japonia) sprzężony z detektorem UV-Vis (SPD-10A, Shimadzu, Japonia) i detektorem fluorescencyjnym (RF-10AXL, Shimadzu, Japonia);
6. System gradientowy HPLC z autosamplerem (LPG-3400M WPS-3000TSL, Dionex, USA) sprzężony z wielokanałowym detektorem elektrochemicznym kulometrycznym (5600A, ESA, USA) i detektorem fluorescencyjnym (FLD-3400RS, Dionex, USA);
7. System izokratyczny HPLC (LC-10, Shimadzu, Japonia) sprzężony z dwoma detektorami amperometrycznymi (ICA-3000, TOA, Japonia i ED40, Dionex, USA);
8. Chromatograf gazowy (7890A, Agilent, USA) wyposażony w detektory MS i FID;
9. Oprogramowanie do obliczeń farmakokinetycznych Biokinetica.

Czytaj więcej

1. Immunoenzymatyczne (ELISA) i immunoizotopowe (RIA) oznaczanie stężeń hormonów:
   • hormonów białkowych (LH, PRL) i receptorów LH/hCG z użyciem preparatów znakowanych jodem (J-125)
   • wykonywanie jodowań hormonów białkowych (LH, PRL) i cytokin (IL-1β, IL-6, TNF-α),
   • hormonów steroidowych (P4, A4, T, E1, E2, kortyzol),
   • prostaglandyn (PGE2, PGF2α) oraz metabolitu PGF2α – PGFM
   • oksytocyny i endoteliny przy zastosowaniu hormonów znakowanych peroksydazą chrzanową (HRP) lub biotyną.
2. Analiza parametrów krytycznych i gazometrii krwi:

   Analiza parametrów gazometrii, elektrolitów i oksymetrii przy zastosowaniu analizatora parametrów krytycznych RAPIDpoint 405 (SIEMENS):

   • gazometria: pH, pCO2, pO2,
   • elektrolity: NA+, K+, Ca++, Cl-,
   • glukoza, HCT,
   • oksymetria: sO2, FO2Hb, FCOHb, FHHb, FMetHb, THb,

   wraz z wieloma wyliczanymi parametrami pochodnymi.

3. Morfometryczna analiza krwi:

   • dwutorowy pomiar leukocytów w dwóch niezależnych kanałach
   • podstawowe i rozszerzone badania morfologiczne krwi bydła, kozy, owcy, konia, świni, kota, psa, królika, świnki morskiej, szczura oraz myszy, przy zastosowaniu analizatora hematologicznego ADVIA 2120i (SIEMENS).

   Wymagana objętość próbki krwi do badań wynosi 157 µl.

4. Immunochemiczno–chemiluminescencyjna analiza krwi przy zastosowaniu analizatora immunochemicznego IMMULITE®1000 (SIEMENS):

   • analiza stężeń hormonów nadnerczy/przysadki, płciowych (np. P4, T, E2, kortyzol),
   • analizy z zakresu fizjologii tarczycy,
   • analizy stężeń czynników wzrostu,
   • analiza markerów stanu zapalnego (IL-1β, TNF-α, IL-10, LBP),
   • analiza wskaźników alergii, anemii, cukrzycy,
   • analiza markerów kardiologicznych, chorób zakaźnych, nowotworowych,
   • stężeń leków

   Materiałem do analiz jest surowica, osocze, medium hodowlane.

5. Analiza specyficznych immunoglobulin E przy zastosowaniu aparatu ImmunoCAP 100:

   • Phadiatop – test przesiewowy różnicujący pacjentów atopowych od nieatopowych,
   • całkowita IgE,
   • całkowita IgE (niski poziom) – dla małych dzieci,
   • specyficzne IgE  – ponad 500 alergenów pojedynczych oraz 70 mieszanek,
   • białko eozynofilowe ECP – monitorowanie leczenia astmy,
   • tryptaza – monitorowanie stanu anafilaksji,
   • gliadyny IgA i IgG – nietolerancja pokarmowa u dzieci,
   • specyficzne IgA w odniesieniu do poszczególnych frakcji mleka,
   • specyficzne IgG oraz IgG4,
   • przeciwciała przeciwtarczycowe: anty-TPO, anty-TG,
   • ponad 22 parametry z zakresu chorób autoimmunologicznych w klasie IgG, IgA,

   W celu wykonania analizy niezbędne jest 40 µl surowicy pacjenta.

6. Jakościowe oznaczania in vitro ludzkich przeciwciał klasy IgG oraz IgE z zastosowaniem aparatu Euroimmun:

   • Metoda immunoblottingu do oceny swoistych przeciwciał klasy IgE skierowanych przeciwko alergenom w surowicy pacjenta,
   • Dostępne panele zawierające kombinacje alergenów po 20 różnych na jednym pasku testowym (wziewny, pediatryczny wziewny, pokarmowy, atopowy), dwa dla jadów owadów, oraz „Profil pediatryczny” zawierający 27 najpopularniejszych alergenów m.in.: spośród alergenów pokarmowych białko i żółtko jaja, białka mleka, mąka pszenna, ryż, soja, owoce i warzywa, a spośród wziewnych: pyłki traw i drzew, alergeny roztoczy i sierści zwierząt.

   Do wykonania analizy niezbędne jest 100 µl surowicy pacjenta.

7. Wykrywanie białek czynnościowych (cytokiny, białka efektorowe, receptory, markery powierzchniowe lub przeciwciała) wydzielanych przez pojedyncze komórki przy zastosowaniu zestawu ELISpot (Enzyme-Linked ImmunoSpot Assay)

Czytaj więcej

1. Stanowisko robocze do immunoenzymatycznej analizy stężeń hormonów (ELISA) składający się z:
   • czytnika do mikropłytek ELISA (KHB)
   • spektrofotometru do mikropłytek i kuwet – Multiscan Spectrum (Thermo Scientific)
   • płuczki automatycznej do mikropłytek
   • inkubatora płytkowego (Heraeus)
2. Stanowisko robocze do immunoizotopowej analizy stężeń hormonów (RIA)
   składające się z:
   • Licznika promieniowania Beta
   • Licznika promieniowania Gamma
   • Wyciągu radiochemiczny
   • Wirówki Beckman
   • Mikrolaba Hamilton
   • Wagi laboratoryjna
   • Ultrazamrażarki –85° C
3. Analizator chemiluminescencyjny IMMULITE® 1000
   • menu analizatora liczy ponad testów 90
   • możliwość jednoczesnego oznaczenia 5 różnych parametrów w jednej próbie
   • automatyczne rozcieńczenia dla wybranych testów
   • wydajność 129 testów na godzinę
   • możliwość pracy w trybie standardowym i „Turbo”
4. ImmunoCAP 100
   • pełna automatyka procesu łącznie z automatycznym pobraniem próbki pacjenta oraz wydrukiem wyników
   • maksymalna pojemność karuzeli: do 48 miejsc
   • maksymalny czas wykonania oznaczenia: 2 godz. 40 min
   • automatyczne rozcieńczanie próbki
   • jednoczesne wykonywanie kilku metod z 1 próbki surowicy krwi
5. Euroimmun – Testy jakościowe oznaczania in vitro ludzkich przeciwciał klasy IgG przeciwko wybranym antygenom (choroby z autoagresji i infekcje), oraz IgE – przeciwko alergenom. Zestaw zawiera paski testowe z naniesionymi w postaci linii oczyszczonymi antygenami oraz zestaw odczynników. Odczyt i komputerowa obróbka wyników przy pomocy programu EUROLineScan.
6. ELISpot (Enzyme-Linked ImmunoSpot Assay)
   • EliScan – skaner do odczytu spotów
   • Eli.Analyse – program do analizy obrazu posiadający możliwości: algorytmy automatycznej korekcji obrazu, algorytmy detekcji zanieczyszczeń, sortowanie plamek (komórek) według wielkości, sortowanie plamek według barwy (Dual Elispot – zastosowanie 2 systemów barwiących pozwala oznaczać 2 różne białka wydzielane przez komórki w jednej hodowli), analiza statystyczna grup obserwacji, analiza serii płytek bez ingerencji z zewnątrz.

Czytaj więcej

Posiadane obecnie zaplecze laboratoryjne, sprzętowe oraz technologiczne pozwala nam na prowadzenie i rozwijanie na odpowiednio wysokim poziomie  centrum pozyskiwania, oceny, konserwowania oraz przechowywania w ciekłym azocie  rezerw genetycznych wielu gatunków zwierząt. Posiadany system komputerowej analizy nasienia (CASA) umożliwi badanie wpływu różnych czynników, w tym występujących w środowisku toksykantów,  na morfologię i parametry ruchu plemników oraz ocenę ich jakości po kriokonserwacji.

Czytaj więcej

W ramach Pracowni utworzono:

Stanowisko do kompleksowej analizy jakości nasienia ssaków, ptaków i ryb oraz zarodków ssaków.

Stanowisko wyposażone jest w:

• Mikroskop fluorescencyjny BX 51 w wersji w pełni zmotoryzowanej w osiach x-y-z z zestawem do analizy obrazu z kamerami o wysokiej rozdzielczości w wersji dwumonitorowej. Posiadane oprogramowanie umożliwia zaawansowaną analizę obrazu, w tym m.in. dekonwolucję, automatyczne wykrywanie obiektów;
• Mikroskopy BX 41 wyposażone w KF z systemami do akwizycji i analizy obrazu, umożliwiające obserwacje przyżyciowe w szerokim zakresie temperatur;
• Systemy do komputerowej analizy ruchu plemników (CASA) firmy Hobson Vision (system analogowo-cyfrowy), firmy IH Medical (system CRISMAS – cyfrowy) oraz firmy Hamilton Thorne (CEROS II – cyfrowy);
• Mikroskop odwrócony IX70 z fluorescencją i mikromanipulatorami do analizy przeżyciowej oocytów i zarodków z oprogramowaniem analitycznym MicroImage.

Stanowisko do profesjonalnej konserwacji gamet i zarodków.

Stanowisko wyposażone jest w:

• Systemy Minicool oraz IceCube 4s do programowanego i komputerowo sterowanego procesu zamrażania materiału biologicznego;
• Sprzęt do automatycznego mrożenia nasienia- MT Freezer;
• System do mrożenia materiału biologicznego nad powierzchnią ciekłego azotu z regulacją wysokości mrożenia;
• Drukarkę do nanoszenia danych na słomki – Easy Coder;
• Półautomatyczną maszynę do napełniania i zamykania słomek – SFS 133;
• Automatyczną maszynę do napełniania i zamykania słomek MPP Quattro;
• Zgrzewarki do zamykania słomek;
• Kontenery o różnej pojemności do przechowywania zamrożonego materiału;
• Ladę chłodniczą z możliwością regulacji temperatury do 0 oC do przeprowadzenia poszczególnych etapów technologicznych konserwacji gamet i zarodków.

Pracownia jest również wyposażona w wytwornicę ciekłego azotu z systemem chłodzenia i niezbędnym wyposażeniem (wydajność około 2L/godz).

Czytaj więcej

Czytaj więcej

Czytaj więcej

§ 1.

1. Na stanowisku profesora nadzwyczajnego (PAN) zatrudnia się osobę, która posiada co najmniej stopień naukowy doktora habilitowanego, a ponadto:
   1. jest lub była promotorem co najmniej jednego przewodu doktorskiego,
   2. od czasu uzyskania stopnia doktora habilitowanego legitymuje się istotnymi osiągnięciami naukowymi, w  tym  oryginalnymi pracami naukowymi opublikowanymi  w czasopismach ujętych  w bazie Web of Sciences (WoS),
   3. kierowała lub kieruje co najmniej trzema projektami badawczymi finansowanymi ze źródeł zewnętrznych,
   4. jest aktywnym popularyzatorem nauki i uczestniczy w życiu naukowym i organizacyjnym środowiska akademickiego i zawodowego.
2. Dyrektor Instytutu w porozumieniu z kierownikiem jednostki organizacyjnej, w której ma być zatrudniony profesor nadzwyczajny, może określić dodatkowe wymagania niż określone w ust. 1. oraz dodatkowe warunki konkursu, jakie musi spełnić osoba kandydująca.
3. Z inicjatywą utworzenia stanowiska profesora nadzwyczajnego może wystąpić zastępca dyrektora ds. naukowych lub kierownik jednostki organizacyjnej Instytutu.
4. Postępowanie kwalifikacyjne przebiega według następującej procedury:
   1. kierownik jednostki organizacyjnej składa wniosek do dyrektora Instytutu w sprawie:
      • utworzenia stanowiska profesora nadzwyczajnego, pozytywnie zaopiniowany przez
      • dyrektora Instytutu ds. naukowych,
   2. ogłoszenie konkursu przez dyrektora Instytutu,
   3. powołanie komisji konkursowej przez dyrektora Instytutu. Zasady pracy komisji określa § 2,
   4. przeprowadzenie i rozstrzygnięcie konkursu przez komisję,
   5. decyzja dyrektora Instytutu.

§ 2.

Zasady pracy Komisji:

1. W skład komisji wchodzi od pięciu do siedmiu osób:
   1. zastępca dyrektora Instytutu ds. naukowych,
   2. przewodniczący Komisji Rady Naukowej Instytutu ds. nauki, rozwoju kadry i oceny pracowników naukowych,
   3. kierownik jednostki organizacyjnej wnioskujący o ustanowienie stanowiska profesora nadzwyczajnego,
   4. co najmniej jeden profesor tytularny zatrudniony w Instytucie, specjalista w dziedzinie naukowej lub pokrewnej, w której ma być ustanowione stanowisko profesora nadzwyczajnego,
   5. co najmniej jeden profesor tytularny niezatrudniony w Instytucie, specjalista w dziedzinie, w której ma być ustanowione stanowisko profesora nadzwyczajnego.
2. Obradom i pracom komisji przewodniczy zastępca dyrektora ds. naukowych.
3. Po zapoznaniu się z dokumentacją złożoną przez osoby kandydujące komisja wstępnie ocenia ich dorobek i decyduje o dalszych etapach postępowania. W przypadku pozytywnej oceny, komisja wybiera jeden z trzech 25 min wykładów monograficznych i ustala termin zebrania naukowego Instytutu, na którym osoba kandydująca przedstawia wykład.
4. Po wykładzie monograficznym komisja wyznacza termin rozmowy kwalifikacyjnej dotyczącej planów badawczych, dydaktycznych i organizacyjnych osoby kandydującej oraz opiniuje kandydaturę w trybie głosowania tajnego.
5. Komisja sporządza protokół i przedstawia wraz z wnioskami dyrektorowi Instytutu.
6. Dyrektor podejmuje decyzję o zatrudnieniu.

§ 3.

Przystępując do konkursu na stanowisko profesora nadzwyczajnego, osoba kandydująca składa w sekretariacie Instytutu następujące dokumenty w wersji drukowanej i na nośniku elektronicznym:

1. podanie,
2. odpis dokumentu potwierdzającego nadanie stopnia naukowego doktora habilitowanego lub tytułu naukowego profesora,
3. zestawienie dorobku naukowego (preferowana forma – Tabela),
4. wykaz publikacji (za okres przed i po uzyskaniu stopnia naukowego doktora habilitowanego),
5. życiorys wraz autoreferatem naukowym oraz listą indywidualnych osiągnięć naukowych,
6. plany badawcze krótkoterminowe (3 lata) oraz zarys planów badawczych długoterminowych (10 lat),
7. tytuły i konspekt 3 wykładów monograficznych spełniających wymogi wykładu dla studentów III stopnia kształcenia wyższego (Studia Doktoranckie) w zakresie dziedziny określonej w konkursie.

Osoby spoza Instytutu składają dodatkowo:

8. kwestionariusz osobowy z 2 zdjęciami;
9. opinię dyrektora naczelnego lub rektora (albo przełożonego) z ostatniego miejsca pracy.

§ 4.

Informacja o osiągnięciach naukowych, dydaktycznych i organizacyjnych (Autoreferat) osoby kandydującej na stanowisko profesora nadzwyczajnego (o objętości do 15 stron) powinna zawierać:

1. Ogólne informacje:
   1. imię i nazwisko,
   2. tytuł i stopień naukowy,
   3. data i miejsce urodzenia,
   4. rok ukończenia studiów wyższych, uczelnia,
   5. rok uzyskania stopnia naukowego doktora, instytucja naukowa,
   6. rok uzyskania stopnia naukowego doktora habilitowanego,
   7. rok uzyskania tytułu naukowego profesora (gdy zachodzi taka okoliczność),
   8. data zatrudnienia w jednostce naukowej, nazwa jednostki organizacyjnej,
   9. data zatrudnienia na stanowisku adiunkta.
2. Syntetyczny opis dotychczasowych prac badawczych i najważniejszych indywidualnych osiągnięć naukowych.
3. Syntetyczny opis planów badawczych: krótkoterminowych (3 lata) i zarys planów długoterminowych (10 lat).
4. Działalność naukowo-badawcza:
   1. liczba publikacji, w tym po uzyskaniu stopnia naukowego doktora habilitowanego,
   2. liczba cytowań bez autocytowań wg. WoS oraz indeks Hirscha bez autocytowań wg bazy SCOPUS,
   3. wykaz najważniejszych prac, po uzyskaniu stopnia doktora habilitowanego,
   4. wykaz projektów badawczych, finansowanych ze źródeł zewnętrznych, w których osoba kandydująca pełniła bądź pełni funkcję kierownika,
   5. działalność w zakresie upowszechniania osiągnięć naukowych, współpraca z regionem, itp. (maksymalnie do 5 pozycji),
   6. współpraca naukowa z zagranicą (forma, zakres, osiągnięcia),
   7. liczba opracowanych recenzji prac naukowych dla czasopism naukowych.
5. Wyjazdy zagraniczne (kraj, instytucja, cel wyjazdu, okres trwania):
   1. staże naukowe, wykłady, projekty, misje,
   2. czynny udział w konferencjach –  dane dotyczące wykładów na zaproszenie, referatów i doniesień ustnych, członkostwa w radach programowych i organizacyjnych, przewodniczenia sesji, itp..
6. Działalność dydaktyczna – poprzednie i  aktualnie prowadzone wykłady, ćwiczenia, seminaria, w tym w języku obcym.
7. Osiągnięcia w kształceniu kadry naukowej:
   1. wykaz wypromowanych magistrów, doktorów lub otwartych przewodów doktorskich,
   2. liczba opracowanych recenzji prac doktorskich i habilitacyjnych.
8. Działalność organizacyjna:
   1. organizacja konferencji naukowych, sympozjów,
   2. udział w pracach organizacyjnych w miejscu zatrudnienia,
   3. udział w kolegiach redakcyjnych polskich lub zagranicznych czasopism naukowych,
   4. funkcje pełnione z wyboru w towarzystwach i organizacjach naukowych – krajowych i zagranicznych,
   5. udział w radach naukowych,
   6. inne formy działalności organizacyjnej.
9. Nagrody i wyróżnienia o randze krajowej i międzynarodowej (rok otrzymania).
10. Inne ważne informacje nieuwzględnione w ust. 2–9.

Czytaj więcej