PL

Wyposażenie i metody badawcze ZIiPR

Metody badawcze

  1. Metody in vivo:
    • metody biotechniki rozrodu świń i krów: synchronizacja rui, superowulacja, inseminacja;
    • ultrasonograficzna (USG) diagnostyka narządów rodnych świni, krowy i klaczy;
    • laparotomia świń i krów: kaniulacja naczyń krwionośnych układu rodnego; mikrodializa ciałek żółtych i innych struktur narządu rodnego;
    • przyżyciowe pozyskiwania jajników i ciałek żółtych krów (poprzez laparotomię lub kolpotomię);
    • biopsje błony śluzowej macicy krowy i klaczy.
  2. Metody in vitro:

    Izolacja enzymatyczna i hodowle komórkowe:

    • komórki nabłonka i tkanki łącznej błony śluzowej macicy świni, krowy, klaczy i kotki,
    • komórki steroidogenne ciałka żółtego krowy, klaczy i kotki,
    • komórki warstwy ziarnistej pęcherzyka jajnikowego krowy,
    • komórki śródbłonka naczyń  krwionośnych ciałka żółtego i błony śluzowej macicy krowy, klaczy i kotki,
    • komórki nabłonkowe zatoki mlekonośnej wymienia krowy,
    • hodowla komórek adherentnych i zawiesinowych,
    • transfekcja komórek.

    Inkubacje tkankowe:

    • skrawki błony śluzowej macicy świni, krowy, klaczy i kotki,
    • skrawki ciałka żółtego świni, krowy i klaczy,
    • skrawki zatoki mlekonośnej wymienia krowy.

    Metody wirusologiczne:

    • izolacja, koncentracja i przygotowanie stocków wirusa,
    • test infekcyjności (określanie współczynnika zakażenia – MOI – multiplicity of infection).
  3. Metody analityczne

    3.1  Metody biologii molekularnej:

    • ekspresja czynników pro- i antyapaptotycznych ( TNFα, IFNγ, IL-1α, Il-6, FasL, BCL2, BAX, Caspase3, Caspase8) i ich receptorów,
    • ekspresja enzymów szlaku steroidogenezy (3β-HSD, StAR, CYP450),
    • ekspresja enzymów szlaku metabolizmu kwasu arachidonowego:
      • szlak powstawania leukotrienów (5-LOX) i ich receptorów
      • szlak powstawania prostaglandyn (PTGS-2, PGES, PGFS, 9KPGR, AKR1B5)
    • ekspresja enzymów związanych z syntezą kwasu lizofosfatydowego (PLD i PLA2) i jego receptorów (LPA1, LPA2, LPA3, LPA4),
    • ekspresja oksytocyny i  jej receptora,
    • ekspresja czynnika wzrostu nerwów i jego receptorów (TrkA, p75) na poziomie mRNA metodą RT Real Time PCR i semiquantitative RT PCR oraz białka metodą Western-blot,
    • klonowanie/PCR (np. genów wirusowych),
    • Western blot (np. badanie ekspresji wirusowych białek litycznych i latentnych),
    • Southern blot,
    • electromobility shift assay (EMSA) –np. wiązanie się białka wirusa do sekwencji pochodzących z genomu wirusa.

    3.2  Immunoizotopowe oznaczanie (RIA) stężeń:

    • hormonów białkowych (LH, PRL) i receptorów LH/hCG z użyciem preparatów znakowanych jodem (J-125),
    • hormonów steroidowych (P4, A4, T, E1, E2, kortyzol), prostaglandyn oraz metabolitu PGF2α – PGFM z użyciem hormonów znakowanych trytem (H3) oraz wykonywanie jodowań hormonów białkowych (LH, PRL) i cytokin (IL-1β, IL-6, TNF-α),

    3.3  Immunoenzymatyczne oznaczanie stężeń (ELISA):

    • hormonów białkowych (LH),
    • hormonów steroidowych (P4, T4, E2, kortyzol),
    • prostaglandyn (PGE2, PGF2α) oraz metabolitu PGF2α – PGFM,
    • oksytocyny i endoteliny przy zastosowaniu hormonów znakowanych peroksydazą chrzanową (HRP) lub biotyną,

    3.4  Immunocytochemiczna lokalizacja:

    • enzymów szlaku przemian kwasu arachidonowego w jajniku, macicy oraz komórkach nabłonkowych zatok mlekonośnych (PTGS-2, PGES, PGFS, AKR1B5, 5-LO),
    • cytokin w jajniku i macicy (TNF-α, IL-1α, IL-1β i innych),
    • enzymów szlaku przemian cholesterolu w jajniku (P450scc, 3β-HSD, aromatazy) oraz komórkach nabłonkowych zatok mlekonośnych (11β-HSD, 3β-HSD),
    • receptorów (TNFR I, TNFR II, IL-1αR, IL-1 βR, LTRI, LTRII, GC-R, LPAR-1, LPAR-2, LPAR-3, LPAR-4, LPAR4, OTR, TrkA, p75),
    • neuroprzekaźników i ich markerów (NPY, VIP, SOM, SP, GAL, CGRP, PACAP, DβH, VACHT, nNOS),
    • fluorescence in situ hybridization (FISH) – wykrywanie genomu wirusa w komórce,
    • znakowanie immunofluorescencyjne (IFA) białek wirusowych w komórce, również w połączeniu z rozprowadzaniem metafaz,
    • fluorescence activated cell sorting (FACS) analysis – analiza cyklu komórkowego.

    3.5  Analiza parametrów krytycznych i gazometrii krwi:

    Analiza parametrów gazometrii, elektrolitów i oksymetrii przy zastosowaniu analizatora parametrów krytycznych RAPIDpoint 405 (SIEMENS).

    3.6  Morfometryczna analiza krwi:

    Podstawowe i rozszerzone badania morfologiczne krwi bydła, kozy, owcy, konia, świni, kota, psa, królika, świnki morskiej, szczura oraz myszy, przy zastosowaniu analizatora hematologicznego ADVIA 2120i (SIEMENS).

    3.7  Immunochemiczna–chemiluminescencyjna analiza krwi:

    Oznaczanie hormonów steroidowych (P4, T, E2, kortyzol) oraz markerów stanu zapalnego (Il-1β, TNF-α, IL-10, LBP), przy zastosowaniu analizatora immunochemicznego IMMULITE®1000 (SIEMENS).

    3.8  Metody proteomiczne: 2D, 2D-DIGE i MALDI-TOF/TOF w celu określenia:

    • enzymów szlaku przemian kwasu arachidonowego w jajniku, macicy oraz komórkach nabłonkowych zatok mlekonośnych (PTGS-2, PGES, PGFS, AKR1B5, 5-LO),
    • białek, które mogą być odpowiedzialne za wczesną zamieralność zarodków u świń,
    • enzymów szlaku przemian cholesterolu w jajniku (P450scc, 3β-HSD, aromatazy) oraz komórkach nabłonkowych zatok mlekonośnych (11β-HSD, 3β-HSD),
    • białek związanych z formowaniem, funkcjonowaniem oraz regresją ciałka żółtego.

    3.9  Koimmunoprecypitacja

    • Określenie związków wiążących 17-β-estradiol.

Wykaz aparatury

  1. Dwa stanowiska robocze do izolacji i hodowli komórek:
    • Komora z przepływem laminarnym Thermo Scientific MSC-ADVANTAGE (180)
    • Komory z przepływem laminarnym Thermo Scientific MSC-ADVANTAGE (120) – 2 szt.
    • Komora Esico Class II BSC
    • Inkubator CO2 ThermoForma
    • Inkubator CO2 Sanyo
    • Inkubator Memmert IMCO2-153
    • Wirówka MPW 350R 2 szt.
    • Wirówka MPW 223E
    • Pompa perystaltyczna VederFlex Scientific
    • Mikroskop odwrócony standardowy Olympus CKX41 – 2 szt.
    • Mikroskop Olympus CX31RBSF-2
    • Inkubatory z wytrząsaniem EB TH15(Edmund Bühler) – 2 szt.
    • Łaźnia wodna z wytrząsaniem Julabo SW23
    • Łaźnia wodna Major Science SWB-10L-1
    • Myjka ultradźwiękowa do pipet Sonorex
    • Autoklaw Sanyo – 2 szt.
    • Wirówka Eppendorf 5804R
    • Cieplarka Sanyo MOV-112F
    • Suszarka-sterylizator Binder E28
    • Suszarka-sterylizator Terma
    • Zmywarka Smeg GW1060C
  2. Stanowisko robocze do izolacji kwasów nukleinowych:
    • Komora z przepływem laminarnym Holten (90)
    • Wirówka laboratoryjna Hettich Universal 32R
    • Wirówka laboratoryjna Eppendorf miniSpin
    • Aparat do elektroforezy agarozowej BIO-RAD PowerPac
    • UV Transilluminator WEALTEC
    • Termocykler BIO-RAD MJ Mini
    • Homogenizator ultradźwiękowy UP50H
    • Homogenizator TissueRuptor Qiagen
    • Wirówka lab Waeltec E-Centrifuge
    • Łaźnia wodna z wytrząsaniem Major Science MW-WB
    • Vortex BioRad Sproud
    • Vortex Mixer LabNet
  3. Stanowisko robocze do Western blot:
    • Aparat do elektroforezy poliakryloamidowej BIO-RAD PowerPac
    • Aparat do mokrego transferu BIO-RAD PowerPac
    • Aparat do półsuchego transferu TE70PWR Amersham Biosciences
    • System detekcji białek SNAP i.d. Millipore
    • RollMixer Chemland
  4. Zintegrowana Pracownia Immunodiagnostyki

    Zespół wspólnie z Zespółem Immunologii i Mikrobiologii Żywności zorganizował Zintegrowaną Pracownię Immunodiagnostyki. Ze strony ZIPR w skład Zintegrowanej Pracowni Immunodiagnostyki wchodzi:

    4.1. Stanowisko robocze do immunoenzymatycznej analizy stężeń hormonów (ELISA);

    4.2. Stanowisko robocze do immunoizotopowej analizy stężeń hormonów (RIA);

    4.3. Stanowisko robocze do morfometrycznej analizy krwi;

    4.4. Stanowisko robocze do immunochemicznej analizy krwi;

    4.5. Stanowisko robocze do analizy parametrów krytycznych i gazometrii krwi;

  5. Pracownia Mikrobiologii i Wirusologii Molekularnej

    5.1 Stanowisko robocze do pracy z kulturami in vitro oraz GMM klasy II;

    5.2 Stanowisko robocze do izolacji fibroblastów z tkanek ludzkich;

    5.3 Stanowisko robocze do analizy ekspresji białek (SDS PAGE + Western blot);

    5.4 Stanowisko robocze do hodowli bakterii na podłożach płynnych i stałych oraz kokultur bakterii z tkankami.

Czytaj więcej

Wyposażenie i metody badawcze ZB

Wykaz aparatury:

  1. Aparat do pomiarów elektrochemicznych  AUTOLAB, Eco Chemie, The Netherlands;
  2. Potencjometr: Labs, Inc. EMF16 Precision Electrochemistry EMF Interface, Lawson, USA;
  3. Piezoelektryczna kwarcowa mikrowaga (QCM) 410 CH Instruments, USA;
  4. Aparat do pomiaru kąta zwilżalności OCA 15 – for DataPhysic, Germany;
  5. Aparat do pomiaru powierzchniowego rezonansu  plazmonów (SPR) AUTOLAB, Eco Chemie, The Netherlands;
  6. Spektrofotometr NANODROP 2000, Thermo Scientific, US.

Techniki pomiarowe:

  • woltamperometria cykliczna,
  • woltamperometria fali prostokątnej,
  • woltamperometria pulsowa różnicowa,
  • elektrochemiczna spektroskopia impedancyjna,
  • mikrowaga kwarcowa,
  • pomiar kąta zwilżania,
  • powierzchniowy rezonans plazmonowy.

Czytaj więcej

Wykaz publikacji

2025

  1. Debernardis, Rossella; Palińska-Żarska, Katarzyna; Judycka, Sylwia; Panda, Abhipsa; Jarmołowicz, Sylwia; Jastrzębski, Jan P.; de Almeida, Tainá R.; Błażejewski, Maciej; Hliwa, Piotr; Krejszeff, Sławomir; Żarski, Daniel. Does transcriptome of freshly hatched fish larvae describe past or predict future developmental trajectory?. Aquaculture 2025, 595(Part 1): art. no 741486 (1-15) (10.1016/j.aquaculture.2024.741486).
  2. Mahadeva, Manohara; Niestępski, Sebastian; Kowacz, Magdalena. Modifying membrane potential synchronously controls the somite’s formation periodicity and growth. Developmental Biology 2025, 517: 317-326 (10.1016/j.ydbio.2024.11.002).
  3. Malecka-Baturo, Kamila; Grabowska, Iwona. Efficiency of electrochemical immuno- vs. apta(geno)sensors for multiple cancer biomarkers detection. Talanta 2025, 281: art. no 126870 (10.1016/j.talanta.2024.126870).

Czytaj więcej

Publikacje ZB

2025

  1. Malecka-Baturo, Kamila; Grabowska, Iwona. Efficiency of electrochemical immuno- vs. apta(geno)sensors for multiple cancer biomarkers detection. Talanta 2025, 281: art. no 126870 (10.1016/j.talanta.2024.126870).

2024

  1. Malecka-Baturo, Kamila; Daniels, Mathias; Dehaen, Wim; Radecka, Hanna; Radecki, Jerzy; Grabowska, Iwona. Voltammetric sensing of chloride based on a redox-active complex: a terpyridine-Co(II)-dipyrromethene functionalized anion receptor deposited on a gold electrode. Molecules 2024, 29(9): art. no 2102 (1-12) (10.3390/molecules29092102).

  2. Malecka-Baturo, Kamila; Żółtowska, Paulina; Jackowska, Agnieszka; Kurzątkowska-Adaszyńska, Katarzyna; Grabowska, Iwona. Electrochemical Aptasensing Platform for the Detection of Retinol Binding Protein-4. Bioelectroanalytics-Basel 2024, 14(2): art. no 101 (1-12) (10.3390/bios14020101).

2023

  1. Grabowska, Iwona; Zapotoczny, S.; Chlopicki, S. Multiplex electrochemical aptasensors for detection of endothelial dysfunction: Ready for prime time?. TrAC – Trends in Analytical Chemistry 2023, 169: art. no 117372 (10.1016/j.trac.2023.117372).
  2. Mikuła, Edyta; Kaczmarek, Halina. Aptamer-based biosensors for biomarkers detection (Part II). Current Medicinal Chemistry 2023, 30(8): 893-894 (10.2174/092986733008221215111423).
  3. Mikuła, Edyta; Malecka-Baturo, Kamila. An overview of the latest developments in the electrochemical aptasensing of neurodegenerative diseases. Coatings 2023, 13(2): art. no 235 (1-21) (10.3390/coatings13020235).
  4. Rudewicz-Kowalczyk, Daria; Grabowska, Iwona. Simultaneous electrochemical detection of LDL and MDA-LDL using antibody-ferrocene or anthraquinone conjugates coated magnetic beads. International Journal of Molecular Sciences 2023, 24(6): art. no 6005 (1-12) (10.3390/ijms24066005).

2022

  1. Grabowska, Iwona; Hepel, Maria; Kurzątkowska-Adaszyńska, Katarzyna. Advances in design strategies of multiplex electrochemical aptasensors. Sensors 2022, 22(1): art. no 161 (1-19) (10.3390/s22010161).
  2. Malecka-Baturo, Kamila. Advances in electrochemical sensors and biosensors. Coatings 2022, 12(8): art. no 1052 (1-4) (10.3390/coatings12081052).
  3. Malecka-Baturo, Kamila; Zaganiaris, Apostolos; Grabowska, Iwona; Kurzątkowska-Adaszyńska, Katarzyna. Electrochemical biosensor designed to distinguish tetracyclines derivatives by ssDNA aptamer labelled with ferrocene. International Journal of Molecular Sciences 2022, 23(22): art. no 13785 (1-13) (10.3390/ijms232213785).
  4. Mikuła, Edyta; Kaczmarek, Halina. Aptamer-based biosensors for biomarkers detection (Part I). Current Medicinal Chemistry 2022, 29(37): 5793-5794 (10.2174/092986732937220912142500).
  5. Mikuła, Edyta; Katrlik, Jaroslav; Rodrigues, Ligia R. Electrochemical aptasensors for Parkinson’s disease biomarkers detection. Current Medicinal Chemistry 2022, 29(37): 5795-5814 (10.2174/0929867329666220520123337).
  6. Radecki, Jerzy; Radecka, Hanna. Voltammetric biosensors in bioanalysis. W: Handbook of Bioanalytics. Ed. Buszewki, Bogusław; Baranowska, Irena. Springer, Cham 2022 (ISBN 978-303095660-8), 747-760 (10.1007/978-3-030-95660-8_34).
  7. Rudewicz-Kowalczyk, Daria; Grabowska, Iwona. Antibody-ferrocene conjugates as a platform for electro-chemical detection of low-density lipoprotein. Molecules 2022, 27(17): art. no 5492 (1-12) (10.3390/molecules27175492).

2021

  1. Gwiazda, Marcin; Bhardwaj, Sheetal K.; Kijeńska-Gawrońska, Ewa; Świeszkowski, Wojciech; Sivasankaran, Unni; Kaushik, Ajeet. Impedimetric and plasmonic sensing of collagen I using a half-antibody-supported, Au-modified, self-assembled monolayer system. Bioelectroanalytics-Basel 2021, 11(7): art. no 227 (1-19) (10.3390/bios11070227).
  2. Kurzątkowska, Katarzyna; Pazos II, Manuel A.; Herschkowitz, Jason I.; Heper, Maria. Cancer-targeted controlled delivery of chemotherapeutic anthracycline derivatives using apoferritin nanocage carriers. International Journal of Molecular Sciences 2021, 22(3): art. no 1362 (1-26) (10.3390/ijms22031362).
  3. Malecka, Kamila; Ferapontova, Elena E. Femtomolar detection of thrombin in serum and cerebrospinal rluid via direct electrocatalysis of oxygen reduction by the covalent G4-hemin-aptamer complex. ACS Applied Materials & Interfaces 2021, 13(32): 37979-37988 (10.1021/acsami.1c03784).
  4. Malecka, Kamila; Kaur, Balwinder; Cristaldi, D. Andrea; Chay, Clarissa S.; Mames, Iwona; Radecka, Hanna; Radecki, Jerzy; Stulz, Eugen. Silver or gold? A comparison of nanoparticle modified electrochemical genosensors based on cobalt porphyrin-DNA. Bioelectrochemistry 2021, 138: art. no 107723 (10.1016/j.bioelechem.2020.107723).
  5. Malecka, Kamila; Mikuła, Edyta; Ferapontova, Elena E. Design strategies for electrochemical aptasensors for cancer diagnostic devices. Sensors 2021, 21(3): art. no 736 (1-41) (10.3390/s21030736).
  6. Mikuła, Edyta. Recent advancements in electrochemical biosensors for Alzheimer’s disease biomarkers detection. Current Medicinal Chemistry 2021, 28: 1-25 (10.2174/0929867327666201111141341).
  7. Palla, Gopal; Malecka, Kamila; Dehaen, Wim; Radecki, Jerzy; Radecka, Hanna. Immunosensor incorporating half-antibody fragment for electrochemical monitoring of Amyloid-β fibrils in artificial blood plasma. Bioelectrochemistry 2021, 137: art. 107643 (1-8) (10.1016/j.bioelechem.2020.107643).
  8. Rudewicz-Kowalczyk, Daria; Grabowska, Iwona. Detection of low density lipoprotein – comparison of electrochemical immuno- and aptasensor. Sensors 2021, 21(22): art. no 7733 (1-14) (10.3390/s21227733).

2020

  1. Anand, Sanu K.; Mathew, Manna R.; Radecki, Jerzy; Radecka, Hanna; Kumar, K. Girish. Individual and simultaneous voltammetric sensing of norepinephrine and tyramine based on poly(L-arginine)/reduced graphene oxide composite film modified glassy carbon electrode. Journal of Electroanalytical Chemistry 2020, 878: art. no 114531 (1-8) (10.1016/j.jelechem.2020.114531).
  2. Kondzior, Mateusz; Grabowska, Iwona. Antibody-electroactive probe conjugates based electrochemical immunosensors. Sensors 2020, 20(7): art. no 2014 (1-15) (10.3390/s20072014).
  3. Malecka, Kamila; Menon, Shalini; Palla, Gopal; Kumar, Krishnapillai G.; Daniels, Mathias; Dehaen, Wim; Radecka, Hanna; Radecki, Jerzy. Redox-active monolayers self-assembled on gold electrodes – effect of their structures on electrochemical parameters and DNA sensing ability. Molecules 2020, 25(3): art. no 607 (1-17) (10.3390/molecules25030607).
  4. Mathew, Manna R.; Anand, Sanu K.; Radecki, Jerzy; Radecka, Hanna; Kumar, K. Girish. Simple and cost-effective “Turn-on” fluorescence sensor for the determination of xanthine. Journal of Fluorescence 2020, 30: 695-702 (10.1007/s10895-020-02543-w).
  5. Palla, Gopal; Narasimha, G.; Reddy, Madhusudana T. Development, validation and enzyme kinetic evaluation of multi walled carbon nano tubes mediated tyrosinase based electrochemical biosensing platform for the voltammetric monitoring of epinephrine. Process Biochemistry 2020, 92: 476-485 (10.1016/j.procbio.2020.02.006).
  6. Radecki, Jerzy; Radecka, Hanna. Redox-active monolayers deposited on gold electrode surface – universal platforms for electrochemical sensing. Sensors and Materials 2020, 32(3): 1065-1078 (10.18494/SAM.2020.2662).
  7. Radecki, Jerzy; Radecka, Hanna. Woltamperometryczne bioczujniki w bioanalizie. W: Bioanalityka w nauce i życiu. Tom 2 Nowe strategie analityczne i rozwiązania aparaturowe. Red. Baranowska, Irena; Boszewski, Bogusław. Wydawnitwo Naukowe PWN 2020 (ISBN 978-83-01-21282-7), Chapter 33: 65-75.
  8. Sivasankaran, Unni; Reinke, Lena; Anand, Sanu K.; Malecka, Kamila; Kumar, Krishnapillai Girish; Radecka, Hanna; Kubik, Stefan; Radecki, Jerzy. Ultrasensitive electrochemical sensing of phosphate in water mediated by a dipicolylamine-zinc(II) complex. Sensors and Actuators B-Chemical 2020, 321: art. no 128474 (1-8) (10.1016/j.snb.2020.128474).

2019

  1. Gołębiewski, Piotr; Puciłowski, Bartłomiej; Sommer, Fabian; Kubik, Stefan; Daniels, Mathias; Dehaen, Wim; Sivasankaran, Unni; Kumar, Krishnapillai G.; Radecka, Hanna; Radecki, Jerzy. Electrochemical sensing of sulfate in aqueous solution with a cyclopeptide-dipyrromethene-Cu(II) or Co(II) complex attached to a gold electrode. Sensors and Actuators B-Chemical 2019, 285: 536-545 (doi: 10.1016/j.snb.2019.01.083).
  2. Malecka, Kamila; Pankratov, Dmitrii; Ferapontova, Elena E. Femtomolar electroanalysis of a breast cancer biomarker HER-2/neu protein in human serum by the cellulase-linked sandwich assay on magnetic beads. Analytica Chimica Acta 2019, 1077: 140-149 (doi: 10.1016/j.aca.2019.05.052).
  3. Malecka, Kamila; Świętoń, Edyta; Verwilst, Peter; Stachyra, Anna; Sirko, Agnieszka; Dehaen, Wim; Radecki, Jerzy; Radecka, Hanna. Ultrasensitive electrochemical genosensor for direct detection of specific RNA sequences derived from avian influenza viruses present in biological samples. Acta Biochimica Polonica 2019, 66(3): 299-304 (doi: 10.18388/abp.2019_2774).
  4. Sivasankaran, Unni; Radecki, Jerzy; Radecka, Hanna; Girish Kumar, Krishnapillai. Copper nanoclusters: an efficient fluorescence sensing platform for quinoline yellow. Luminescence 2019, 34(2): 243-248 (doi: 10.1002/bio 3601).
  5. Szunerits, Sabine; Mishyn, Vladyslav; Grabowska, Iwona; Boukherroub, Rabah. Electrochemical cardiovascular platforms: Current state of the art and beyond. Bioelectroanalytics & Bioelectronics 2019, 131: 287-298 (doi: 10.1016/j.bios.2019.02.010).

2018

  1. Gołębiewski, Piotr; Sommer, Fabian; Kubik, Stefan; Radecka, Hanna; Radecki, Jerzy. Ion-channel mimetic sensor incorporating an anion-binding cyclopeptide designed for sulfate determination in dilute aqueous solutions. Journal of Electroanalytical Chemistry 2018, 812: 249-257 (doi: 10.1016/j.jelechem.2018.01.035).
  2. Kaur, Balwinder; Malecka, Kamila; Chay, Clarissa S.; Cristaldi, Domenico A.; Mames, Iwona; Radecka, Hanna; Radecki, Jerzy; Stulz, Eugen. Approaching single DNA molecule detection with an ultrasensitive electrochemical genosensor based on gold nanoparticles and Cobalt-porphyrin DNA conjugates. Chemical Communications 2018, 54(79): 11108-11111 (doi: 10.1039/C8CC05362F).
  3. Mikuła, Edyta; Erdmann Silva, Cristiane; Kopera, Edyta; Zdanowski, Konrad; Radecki, Jerzy; Radecka, Hanna. Highly sensitive electrochemical biosensor based on redox – active monolayer for detection of anti-hemagglutinin antibodies against swine-origin influenza virus H1N1 in sera of vaccinated mice. BMC Veterinary Research 2018, 14(1): art. no 328 (1-9) (doi: 10.1186/s12917-018-1668-9).
  4. Grabowska, Iwona; Sharma, Neha; Vasilescu, Alina; Iancu, Madalina; Badea, Gabriela; Boukherroub, Rabah; Ogale, Satishchandra; Szunerits, Sabine. Electrochemical aptamer-based biosensors for the detection of cardiac biomarkers. ACS Omega 2018, 3(9): 12010-12018 (doi: 10.1021/acsomega.8b01558).

2017

  1. Kaur, Balwinder; Erdmann, Cristiane; Daniels, Mathias; Dehaen, Wim; Rafiński, Zbigniew; Radecka, Hanna; Radecki, Jerzy. Highly sensitive electrochemical sensor for the detection of anions in water based on redox active monolayer incorporating anion receptor. Analytical Chemistry 2017, 89(23): 12756-12763 (doi: 10.1021/acs.analchem.7b03001).
  2. Kurzątkowska, Katarzyna; Santiago, Ty; Hepel, Maria. Plasmonic nanocarrier grid-enhanced Raman sensor for studies of anticancer drug delivery. Bioelectroanalytics & Bioelectronics 2017, 91: 780-787 (doi: 10.1016/j.bios.2017.01.049).
  3. Kurzątkowska, Katarzyna; Sayin, Serkan; Yilmaz, Mustafa; Radecka, Hanna; Radecki, Jerzy. Gold electrodes modified with calix[4]arene for electrochemical determination of dopamine in the presence of selected neurotransmitters. Sensors 2017, 17(6): art. no 1368 (1-13) (doi: 10.3390/s17061368).
  4. Mikuła, Edyta; Wysłouch-Cieszyńska, Aleksandra; Zhukova, Liliya; Verwilst, Peter; Dehaen, Wim; Radecki, Jerzy; Radecka, Hanna. Electrochemical biosensor for the detection of glycated albumin. Current Alzheimer Research 2017, 14(3):345-351 (doi: 10.2174/1567205013666161108110542).

2016

  1. Grabowska, Iwona; Dehaen, Wim; Radecka, Hanna; Radecki, Jerzy. Exploring of protein-protein interactions at the solid-aqueous interface by means of contact angle measurements. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces 2016, 141: 558-564 (doi: 10.1016/j.colsurfb.2016.02.005).
  2. Jarocka, Urszula; Sawicka, Róża; Góra-Sochacka, Anna; Sirko, Agnieszka; Dehaen, Wim; Radecki, Jerzy; Radecka, Hanna. An electrochemical immunosensor based on a 4,4′-thiobisbenzenethiol self-assembled monolayer for the detection of hemagglutinin from avian influenza virus H5N1. Sensors and Actuators B: Chemical 2016, 228: 25-30 (doi: 10.1016/j.snb.2016.01.001).
  3. Kurzątkowska, Katarzyna; Jankowska, Agata; Wysłouch-Cieszyńska, Aleksandra; Zhukova, Liliya; Puchalska, Monika; Dehaen, Wim; Radecka, Hanna; Radecki, Jerzy. Voltammetric detection of the S100B protein using His-tagged RAGE domain immobilized onto a gold electrode modified with a dipyrromethene-Cu(II) complex and different diluents. Journal of Electroanalytical Chemistry 2016, 767: 76-83 (doi: 10.1016/j.jelechem.2016.02.012).
  4. Malecka, Kamila; Stachyra, Anna; Góra-Sochacka, Anna; Sirko, Agnieszka; Zagórski-Ostoja, Włodzimierz; Radecka, Hanna; Radecki, Jerzy. Electrochemical genosensor based on disc and screen printed gold electrodes for detection of specific DNA and RNA sequences derived from avian influenza virus H5N1. Sensors and Actuators B: Chemical 2016, 224: 290-297 (doi: 10.1016/j.snb.2015.10.044).
  5. Radecka, Hanna; Radecki, Jerzy. Electrochemical sensors for detections of influenza viruses: fundamentals and applications. W: Steps Forwards in Diagnosing and Controlling Influenza. Ed. Baddour, Manal Mohammad. InTech 2016 (ISBN 978-953-51-2732-1), Chapter 3: 47-59 (doi: 10.5772/64423).

2015

  1. Jarocka, Urszula; Sawicka, Róża; Stachyra, Anna; Góra-Sochacka, Anna; Sirko, Agnieszka; Zagórski-Ostoja, Włodzimierz; Sączyńska, Violetta; Porębska, Anna; Dehaen, Wim; Radecki, Jerzy; Radecka, Hanna. A biosensor based on electroactive dipyrromethene-Cu(II) layer deposited onto gold electrodes for the detection of antibodies against avian influenza virus type H5N1 in hen sera. Analytical and Bioanalytical Chemistry 2015, 407(25): 7807-7814 (doi: 10.1007/s00216-015-8949-y).
  2. Kurzątkowska, Katarzyna; Sayin, Serkan; Yilmaz, Mustafa; Radecka, Hanna; Radecki, Jerzy. Calix[4]arene derivatives as dopamine hosts in electrochemical sensors. Sensors and Actuators B: Chemical 2015, 218: 111-121 (doi: 10.1016/j.snb.2015.04.110).
  3. Kurzątkowska, Katarzyna; Sirko, Agnieszka; Zagórski-Ostoja, Włodzimierz; Dehaen, Wim; Radecka, Hanna; Radecki, Jerzy. Electrochemical label-free and reagentless genosensor based on an ion barrier switch-off system for DNA sequence-specific detection of the avian influenza virus. Analytical Chemistry 2015, 87(19): 9702-9709 (doi: 10.1021/acs.analchem.5b01988).
  4. Malecka, Kamila; Stachyra, Anna; Góra-Sochacka, Anna; Sirko, Agnieszka; Zagórski-Ostoja, Włodzimierz; Dehaen, Wim; Radecka, Hanna; Radecki, Jerzy. New redox-active layer create via epoxy-amine reaction – The base of genosensor for the detection of specific DNA and RNA sequences of avian influenza virus H5N1. Bioelectroanalytics & Bioelectronics 2015, 65: 427-434 (doi: 10.1016/j.bios.2014.10.069).
  5. Radecka, Hanna; Radecki, Jerzy. Label-free electrochemical immunosensors for viruses and antibodies detection – review. Journal of the Mexican Chemical Society 2015, 59(4): 269-275 (pdf).
  6. Radecka, Hanna; Radecki, Jerzy. Mechanisms of analytical signals generated by electrochemical genosensors – review. Journal of the Mexican Chemical Society 2015, 59(4): 276-281 (pdf).
  7. Radecka, Hanna; Radecki, Jerzy. Development of electrochemical sensors for DNA analysis. W: DNA in Supramolecular Chemistry and Nanotechnology. Ed. Stulz, Eugen; Clever, Guido H. John Wiley & Sons 2015 (ISBN 978-1-118-69686-6), Chapter 3.1: 140-157.
  8. Kowalonek, Jolanta; Kaczmarek, Halina; Mikuła, Edyta. Studies of plasma treated styrene-based ionomers [Badania jonomerów styrenowych poddanych działaniu plazmy]. Polimery 2015, 60(4): 232-241 (doi: 10.14314/polimery.2015.232).

2014

  1. Grabowska, Iwona; Maes, Wouter; Ngo, Thien H.; Rohand, Taoufik; Dehaen, Wim; Radecki, Jerzy; Radecka, Hanna. Multiple redox-active sites in copper dipyrromethene-corrole self-assembled monolayers deposited onto gold electrodes. International Journal of Electrochemical Science 2014, 9(3): 1232-1249 (pdf).
  2. Grabowska, Iwona; Malecka, Kamila; Jarocka, Urszula; Radecki, Jerzy; Radecka, Hanna. Electrochemical biosensors for detection of avian influenza virus – current status and future trends. Acta Biochimica Polonica 2014, 61(3): 471-478 (pdf).
  3. Grabowska, Iwona; Singleton, Daniel G.; Stachyra, Anna; Góra-Sochacka, Anna; Sirko, Agnieszka; Zagórski-Ostoja, Włodzimierz; Radecka, Hanna; Stulz, Eugen; Radecki, Jerzy. A highly sensitive electrochemical genosensor based on Co-porphyrin-labelled DNA. Chemical Communications 2014, 50(32): 4196-4199 (doi: 10.1039/c4cc00172a).
  4. Grabowska, Iwona; Stachyra, Anna; Góra-Sochacka, Anna; Sirko, Agnieszka; Olejniczak, Agnieszka B.; Leśnikowski, Zbigniew J.; Radecki, Jerzy; Radecka, Hanna. DNA probe modified with 3-iron bis(dicarbollide) for electrochemical determination of DNA sequence of avian influenza virus H5N1. Bioelectroanalytics & Bioelectronics 2014, 51: 170-176 (doi: 10.1016/j.bios.2013.07.026).
  5. Grabowska, Iwona; Zborowska, Magdalena; Nguyen, N. Tran; Dehaen, Wim; Stulz, Eugen; Wood, James W.; Radecka, Hanna; Radecki, Jerzy. Deposition of Ni(II)porphyrin monolayer on the gold electrode via azide-alkyne click – coupling and its electrochemical characterization. International Journal of Electrochemical Science 2014, 9: 5948-5960 (pdf).
  6. Jarocka, Urszula; Sawicka, Róża; Góra-Sochacka, Anna; Sirko, Agnieszka; Zagórski-Ostoja, Włodzimierz; Radecka, Hanna; Radecki, Jerzy. Electrochemical immunosensor for detection of antibodies against influenza A virus H5N1 in hen serum. Bioelectroanalytics & Bioelectronics 2014, 55: 301-306 (doi: 10.1016/j.bios.2013.12.030).
  7. Jarocka, Urszula; Sawicka, Róża; Góra-Sochacka, Anna; Sirko, Agnieszka; Zagórski-Ostoja, Włodzimierz; Radecki, Jerzy; Radecka, Hanna. An immunosensor based on antibody binding fragments attached to gold nanoparticles for the detection of peptides derived from avian influenza hemagglutinin H5. Sensors 2014, 14(9): 15714-15728 (doi: 10.3390/s140915714).
  8. Kurzątkowska, Katarzyna; Mielecki, Marin; Grzelak, Krystyna; Verwilst, Peter; Dehaen, Wim; Radecki, Jerzy; Radecka, Hanna. Immobilization of His-tagged kinase JAK2 onto the surface of a plasmon resonance gold disc modified with different copper(II) complexes. Talanta 2014, 130: 336-341 (doi: 10.1016/j.talanta.2014.07.013).
  9. Malecka, Kamila; Michalczuk, Lech; Radecka, Hanna; Radecki, Jerzy. Ion-channel genosensor for the detection of specific DNA sequences derived from plum pox virus in plant extracts. Sensors 2014, 14(10): 18611-18624 (doi: 10.3390/s141018611).
  10. Mikuła, Edyta; Wysłouch-Cieszyńska, Aleksandra; Zhukova, Liliya; Puchalska, Monika; Verwilst, Peter; Dehaen, Wim; Radecki, Jerzy; Radecka, Hanna. Voltammetric detection of S100B protein using His-tagged receptor domains for advanced glycation end products (RAGE) immobilized onto a gold electrode surface. Sensors 2014, 14(6): 10650-10663 (doi: 10.3390/s140610650).
  11. Wojtasik, Justyn; Mielecki, Marcin; Kurzątkowska, Katarzyna; Grzelak, Krystyna; Verwilst, Peter; Dehaen, Wim; Radecki, Jerzy; Radecka, Hanna. Pentetic acid (DPTA) Cu(II) monolayer deposited on gold electrode – The base of biosensors for electrochemical screening of kinase JAK2 and potential inhibitor interactions. Sensors and Actuators B: Chemical 2014, 196: 223-230 (doi: 10.1016/j.snb.2014.01.095).
  12. Zborowska, Magdalena; Sulima, Magdalena; Marszałek, Ilona; Wysłouch-Cieszyńska, Aleksandra; Radecka, Hanna; Radecki, Jerzy. Nitrilotriacetic acid-copper(II) monolayer deposited on a gold electrode for the immobilization of histidine tagged V domain of receptor for advanced glycation end products – the basis of amyloid-beta peptide sensing. Analytical Letters 2014, 47(8): 1375-1391 (doi: 10.1080/00032719.2013.867501).

2013

  1. Grabowska, Iwona; Malecka, Kamila; Stachyra, Anna; Góra-Sochacka, Anna; Sirko, Agnieszka; Zagórski-Ostoja, Włodzimierz; Radecka, Hanna; Radecki, Jerzy. Single electrode genosensor for simultaneous determination of sequences encoding hemagglutinin and neuraminidase of avian influenza virus type H5N1. Analytical Chemistry 2013, 85(1): 10167-10173 (doi: 10.1021/ac401547h).
  2. Jargiło, Agata; Grabowska, Iwona; Radecka, Hanna; Sulima, Magdalena; Marszałek, Ilona; Wysłouch-Cieszyńska, Aleksandra; Dehaen, Wim; Radecki, Jerzy. Redox active dipyrromethene-Cu(II) monolayer for oriented immobilization of His-tagged RAGE domains – the base of electrochemical biosensors for determination of Aβ16-23′. Electroanalysis 2013, 25(5): 1185-1193 (doi: 10.1002/elan.201200537).
  3. Jarocka, Urszula; Radecka, Hanna; Malinowski, Tadeusz; Michalczuk, Lech; Radecki, Jerzy. Detection of prunus necrotic ringspot virus in plant extracts with impedimetric immunosensor based on glassy carbon electrode. Electroanalysis 2013, 25(2): 433-438 (doi: 10.1002/elan.201200470).
  4. Kurzątkowska, Katarzyna; Ostatná, Veronika; Hamley, Ian W.; Doneux, Thomas; Paleček, Emil. Electrochemical sensing of 2D condensation in amyloid peptides. Electrochimica Acta 2013, 106: 43-48 (doi: 10.1016/j.electacta.2013.05.057).
  5. Malecka, Kamila; Grabowska, Iwona; Radecki, Jerzy; Stachyra, Anna; Góra-Sochacka, Anna; Sirko, Agnieszka; Radecka, Hanna. Electrochemical detection of avian influenza virus genotype using amino-ssDNA probe modified gold electrodes. Electroanalysis 2013, 25(8): 1871-1878 (doi: 10.1002/elan.201300113).
  6. Mielecki, Marcin; Wojtasik, Justyn; Zborowska, Magdalena; Kurzątkowska, Katarzyna; Grzelak, Krystyna; Dehaen, Wim; Radecki, Jerzy; Radecka, Hanna. Oriented immobilization of His-tagged kinase RIO1 protein on redox active N-(IDA-like)-Cu(II) monolayer deposited on gold electrode – The base of electrochemical biosensor. Electrochimica Acta 2013, 96: 147-154 (doi: 10.1016/j.electacta.2013.02.085).
  7. Mikuła, Edyta; Sulima, Małgorzata; Marszałek, Ilona; Wysłouch-Cieszyńska, Aleksandra; Verwilst, Peter; Dehaen, Wim; Radecki, Jerzy; Radecka, Hanna. Oriented immobilization of His-tagged protein on a redox active thiol derivative of DPTA-Cu(II) layer deposited on a gold electrode – The base of electrochemical biosensors. Sensors 2013, 13(9): 11586-11602 (doi: 10.3390/s130911586).

2012

  1. Malecka, Kamila; Grabowska, Iwona; Radecki, Jerzy; Stachyra, Anna; Góra-Sochacka, Anna; Sirko, Agnieszka; Radecka, Hanna. Voltametric detection of a specific DNA sequence of avian influenza virus H5N1 using HS-ssDNA probe deposited onto gold electrode. Electroanalysis 2012, 24(2): 439-446 (doi: 10.1002/elan.201100566).
  2. Ostatna, Veronika; Černocká, Hana; Kurzątkowska, Katarzyna; Paleček, Emil. Native and denatured forms of proteins can be discriminated at edge plane carbon electrodes. Analytica Chimica Acta 2012, 735: 31-36 (doi: 10.1016/j.aca.2012.05.012).
  3. Radecka, Hanna; Radecki, Jerzy; Grabowska, Iwona; Kurzątkowska, Katarzyna. Electrochemical Sensors and Bioelectroanalytics Based on Self-Assembled Monolayers: Application of Nanoparticles for Analytical Signals Amplification. W: Functional Nanoparticles for Bioanalysis, Nanomedicine, and Bioelectonic Devices Volume 1. Ed.: Hepel, Maria; Zhong, Chuan-Jian. ACS Symposium Series. American Chemical Society, Washington 2012
    (ISBN 9780841227750), Chapter 11: 293-312 (doi: 10.1021/bk-2012-1112.ch011).

Czytaj więcej

Współpraca międzynarodowa ZB

  1. Katholieke Universiteit Leuven, KU Leuven, Department of Chemistry, Leuven, Belgia
  2. University of Lille, the Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Francja
  3. The State University of New York at Potsdam, USA
  4. Cornell University, USA
  5. Interdisciplinary Nanoscience Centre (iNANO), Aarhus University, Dania
  6. University of Rome La Sapienza, Włochy
  7. Institute of Biophysics of the Czech Academy of Sciences, Czechy

Czytaj więcej

Najważniejsze osiągnięcia naukowe ZB

Zastosowanie koniugatów przeciwciało-ferrocen jako platformy do elektrochemicznego wykrywania lipoprotein o niskiej gęstości

Celem badań było opracowanie platformy elektrochemicznej przeznaczonej do wykrywania LDL opartej o koniugaty przeciwciało-ferrocen. Przeciwciało przeciw apolipoproteinie B-100 znakowane ferrocenem unieruchomiono kowalencyjnie na warstwie 4-aminotiofenolu (4-ATP) na powierzchni złotych elektrod. Po interakcji LDL z koniugatem przeciwciało-ferrocen zaobserwowano spadek sygnału redoks ferrocenu rejestrowanego metodą woltamperometrii fali prostokątnej, który zależy liniowo w zakresie stężeń od 0,01 ng/ml do 1,0 ng/ml. Uzyskana granica wykrywalności wynosiła 0,53 ng/mL. Ponadto zaobserwowano dobrą selektywność względem albuminy surowicy ludzkiej (HSA), HDL i lipoproteiny o niskiej gęstości modyfikowanej dialdehydem malonowym (MDA-LDL). Ponadto akceptowalne wskaźniki odzysku LDL w próbkach surowicy ludzkiej wskazują na możliwość zastosowania immunosensora w diagnostyce klinicznej.

Opracowanie czujnika elektrochemicznego do oznaczania dopaminy w ludzkim osoczu

Tiolowa pochodna korolu, unieruchomoina na powierzchi elektrody zlotej, została zastosowana jako selektywny receptor zdolny do wykrywania dopaminy. Supramolekularny kompleks powstający dzięki wiązaniom wodorowym  pomiędzy cząsteczką korolu spełniajaca funkcję „gospodarza” a  cząsteczka dopaminy spełniającą funkcję „gościa” został wykrywany przy pomocy woltamperometrii fali prostokątnej Osteryoung (OSWV) oraz elektrochemicznej spektroskopii impedancyjnej (EIS) w obecności markera redox [Ru(NH3)6]Cl3.

Opracowany czujnik charakteryzował się dobrą czułością w stosunku do dopaminy rzędu  10-12 M, dobrą selektywnością (składniki ludzkiego osocza na wpływały na wyniki oznaczeń dopmainy), szybką i prosta procedurą przygotowywania i oznaczania. Te parametry upoważniają do jego zastosowania w klinicznych analizach .

Opracowanie immunoczujnika przeznaczonego do wykrywania wirusa ospowatości śliwy (PPV) w ekstraktach roślinnych

W opracowanym immunoczujniku do unieruchamiania poliklonalnego przeciwciała anti-PPV IgG zastosowano warstwę złota koloidalnego przyłączonego kowalencyjnie  na powierzchni  1,6-hexaneditiolu.

Immunoczujnik charakteryzuje się dobra granica wykrywalności (10 pg PPV/ml) oraz szerokim zakresem linowej odpowiedzi (10 pg PPV/ml – 200 pg/ml). Obecność matrycy pochodzącej z ekstraktów roślinnych (Prunus domestica oraz Nicotiana benthamiana) nie wpływała na oznaczanie wirusa PPV.

Opracowany immunoczujnik jest zdolny do wykrywania wirusa w ekstraktach roślinnych zawierających 0.01% ekstraktu pochodzącego z roślin zainfekowanych wirusem PPV.

Opracowanie genoczujnika przeznaczonego do wykrywania wirusa ptasiej grypy H5N1

Genoczujnik został opracowany z wykorzystaniem zjawiska kowalencyjnego unieruchamiania sondy ssDNA-SH na powierzchni elektrod złotych. Charakteryzuje się bardzo dobrą granicą wykrywalności rzędu 2.2•10-11 M oraz bardzo dobrą selektywnością. W obecności niekomplementarnych sekwencji ssDNA  obserwowano bardzo słabe sygnały analityczne. Jena z kluczowych zalet opracowanego genoczujnika jest jego zdolność do rozróżniania produktów PCR posiadających sekwencje nukleotydów komplementarnych do sondy DNA w różnych pozycjach. Powyższe parametry upoważniają zarekomendowanie opracowanego genoczujnika do wykrywania wirusa ptasiej grypy H5N1.

Opracowanie bioczujnika do wykrywania akrylamidu w ekstraktach z chipsów ziemniaczanych

Podstawą opracowanego bioczujnika jest hemoglobina, osadzona na powierzchni elektrody z pasta węglową, spełniająca rolę receptora („Gospodarza”) odpowiedzialnego za selektywne rozpoznanie akrylamidu. Tworzenie się kompleksu hemoglobina-akrylamid wpływa na elektrochemiczne parametry centrum hemu hemoglobiny. Wraz ze wzrostem stężenia akrylamidu obserwowano obniżenie natężenia prądu utlenieni i redukcji (Hb-Fe3+/Hb-Fe2+).

Opracowany bioczujnik charakteryzował się prostą procedurą przygotowania, krótkim czasem oznaczania, bardzo dobrą granicą wykrywalności rzędu 1.2 x 10 –10   oraz dobrą selektywnością. Obecność matrycy pocącej z wodnego ekstraktu z chipsów ziemniaczanych nie wpływała na czułość oznaczeń akrylamidu.

Powyższe parametry upoważniaja zarekomdowanie bioczujnika do elektrochemicznego oznaczania akrylamidu w materiałach żywnościowych.

Opracowanie potencjometrycznych czujników do wykrywania niezdysocjowanych izomerów pochodnych diaminobenzenu.

Głównym osiągnięciem  było wykazanie, że b polimerowe membrany zmodyfikowane cząsteczkami receptora posiadającego grupy fenolowe, generują kationowy potencjometryczny sygnał w obecności niezdysocjowanych cząsteczek analitu ( „gościa”) posiadających grupy NH2.  Podstawą generowania potencjometrycznego sygnału jest przeniesienie protonu z fazy wodnej na supramolekularny kompleks zlokalizowany na granicy faz: membrana /faza wodna.

Właściwości kwasowo/zasadowe  cząsteczek pełniących rolę „gospodarza” decydują o kierunku przeniesienia protonów.

Czytaj więcej

Aktualne projekty i granty badawcze ZB

  1. Dr Kamila Malecka-Baturo, projekt pt. „Metalopeptydy jako alternatywne znaczniki do konstrukcji elektrochemicznych bioczujników”, finansowany przez Narodowe Centrum Nauki, numer: 2022/06/X/ST4/01541.
  2. Dr Edyta Mikuła, projekt w ramach konkursu MINIATURA 5 pt. „Opracowanie platformy opartej na aptamerach do jednoczesnego elektrochemicznego oznaczania wybranych biomarkerów choroby Parkinsona” finansowany przez Narodowe Centrum Nauki, numer: 2021/05/X/ST4/00336.
  3. Dr Katarzyna Kurzątkowska, projekt pt. „Ultra-czułe narzędzia do wykrywania antybiotyków jako nowa strategia kontroli leczenia i okresu karencji po antybiotykoterapii bydła” finansowany przez Narodowe Centrum Nauki, numer: 2020/37/B/NZ9/03423.
  4. Dr hab. inż. Iwona Grabowska, projekt pt. „Koniugaty przeciwciało-znacznik redoks jako platforma do jednoczesnego elektrochemicznego oznaczania lipoprotein niskiej gęstości (LDL) oraz utlenionych lipoprotein niskiej gęstości (oxLDL)” finansowany przez Narodowe Centrum Nauki, numer: 2017/25/B/ST4/00139.
  5. Dr Katarzyna Kurzątkowska, projekt pt. „Opracowanie metod osadzania białka mitochondrialnego kanału wapniowego typu uniport na powierzchni elektrod złotych” finansowany przez Narodowe Centrum Nauki, numer: DEC-2018/02/X/ST4/02565.

Czytaj więcej

Publikacje ZLRF

2024

  1. Herman, Andrzej P.; Tomczyk, Monika; Wójcik, Maciej; Bochenek, Joanna; Antushevich, Hanna; Herman, Anna; Wiechetek, Wiktoria; Szczepkowska, Aleksandra; Marciniak, Elżbieta; Tomaszewska-Zaremba, Dorota. Effect of Caffeine on the Inflammatory-Dependent Changes in the GnRH/LH Secretion in a Female Sheep Model. International Journal of Molecular Sciences 2024, 25(5): art. no 2663 (1-15) (10.3390/ijms25052663).
  2. Neuman, Nicoletta M.; Dziekońska, Anna; Orzołek, Aleksandra; Gilun, Przemysław D. A comparison of the biological properties of European red deer (Cervus elaphus elaphus) spermatozoa stored in the epididymides and in a liquid state at 5 °C. Animal Reproduction Science 2024, 260: art. no 107387 (1-13) (10.1016/j.anireprosci.2023.107387).

2023

  1. Gilun, Przemysław; Koziorowska-Gilun, Magdalena; Wąsowska, Barbara; Sowa-Kućma, Magdalena; Kozioł, Katarzyna; Romerowicz-Misielak, Maria; Kordan, Władysław; Koziorowski, Marek. Endogenous carbon monoxide (CO) as a modulating factor of molecular biological clock in the hypothalamic structures involved in light transmission in pig and wild boar hybrid during long and short day season. Polish Journal of Veterinary Sciences 2023, 26(1): 65-82 (10.24425/pjvs.2023.145008).
  2. Rybska, Marta; Billert, Maria; Skrzypski, Marek; Wojciechowicz, Tatiana; Kubiak, Magdalena; Łukomska, Anna; Nowak, Tomasz; Włodarek, Jan; Wąsowska, Barbara. Expression and localization of the neuropeptide phoenixin-14 and its receptor GRP173 in the canine reproductive organs and periovarian adipose tissue. Animal Reproduction Science 2023, 255: art. no 107282 (1-18) (10.1016/j.anireprosci.2023.107282).
  3. Szczepkowska, Aleksandra; Bochenek, Joanna; Wójcik, Maciej; Tomaszewska-Zaremba, Dorota; Antushevich, Hanna; Tomczyk, M.; Skipor, Janina; Herman, Andrzej P. Effect of caffeine on adenosine and ryanodine receptor gene expression in the hypothalamus, pituitary, and choroid plexus in ewes under basal and LPS challenge conditions. Journal of Animal and Feed Sciences 2023, 32(1): 17-25 (10.22358/jafs/156762/2022).

2022

  1. Mańkowska, Anna; Gilun, Przemysław D.; Zasiadczyk, Łukasz; Sobiech, Przemysław; Fraser, Leyland. Expression of TXNRD1, HSPA4L and ATP1B1 genes associated with the freezability of boar sperm. International Journal of Molecular Sciences 2022, 23(16): art. no 6320 (1-18) (10.3390/ijms23169320).
  2. Nowak, Sławomir; Gilun, Przemysław; Kozioł, Katarzyna; Romerowicz-Misielak, Maria; Koziorowska-Gilun, Magdalena; Wąsowska, Barbara. Carbon monoxide (CO) as a retinal regulator of heme oxygenases -1, and -2 (HO’s) expression. Biomedicines 2022, 10(2): art. no 358 (1-9) (10.3390/biomedicines10020358).
  3. Rybska, Marta; Billert, Maria; Skrzypski, Marek; Kubiak, Magdalena; Woźna-Wysocka, Magdalena; Łukomska, Anna; Nowak, Tomasz; Błaszczyk-Cichoszewska, Joanna; Pomorska-Móla, Małgorzata; Wąsowska, Barbara. Canine cystic endometrial hyperplasia and pyometra may downregulate neuropeptide phoenixin and GPR173 receptor expression. Animal Reproduction Science 2022, 238: art. no 106931 (1-13) (10.1016/j.anireprosci.2022.106931).

2021

  1. Domżalska, Małgorzata; Wiczkowski, Wiesław; Szczepkowska, Aleksandra; Chojnowska, Sylwia; Misztal, Tomasz; Walter, Fruzsina R.; Deli, Maria A.; Ishikawa, Hiroshi; Schroten, Horst; Schwerk, Christian; Skipor, Janina. Effect of lipopolysaccharide-induced inflammatory challenge on β-glucuronidase activity and quercetin and its metabolites concentration in the choroid plexus, blood plasma and cerebrospinal fluid. International Journal of Molecular Sciences 2021, 22(13): art. no 7122 (1-17) (10.3390/ijms22137122).
  2. Gilun, Przemysław D.; Flisikowski, Krzysztof; Flisikowska, Tatiana; Kwiatkowska, Joanna; Wąsowska, Barbara; Koziorowska-Gilun, Magdalena. Role of methylation in period2 (PER2) transcription in the context of the presence or absence of light signals: natural and chemical – studies on the pig model. International Journal of Molecular Sciences 2021, 22(15): art. no 7796 (1-17) (10.3390/ijms22157796).
  3. Płatosz, Natalia; Bączek, Natalia; Topolska, Joanna; Szawara-Nowak, Dorota; Skipor, Janina; Milewski, Stanisław; Wiczkowski, Wiesław. Chokeberry anthocyanins and their metabolites ability to cross the blood-cerebrospinal fluid barrier. Food Chemistry 2021, 346: art. no 128730 (1-11) (10.1016/j.foodchem.2020.128730).
  4. Rybska, Marta; Woźna-Wysocka, Magdalena; Wąsowska, Barbara; Skrzypski, Marek; Kubiak, Magdalena; Błaszak, Beata; Łukomska, Anna; Nowak, Tomasz; Jaśkowski, Jędrzej M. Expression of transforming growth factor beta isoforms in canine endometrium with cystic endometrial hyperplasia–pyometra complex. Animals 2021, 11(3): art. no 1844 (1-14) (10.3390/ani11061844).
  5. Skipor, Janina; Szczepkowska, Aleksandra; Kowalewska, Marta; Domżalska, Małgorzata; Herman, Andrzej P.; Krawczyńska, Agata. Photoperiod alters the choroid plexus response to LPS-induced acute inflammation in ewes. Annals of Animal Science 2021, 21(2): 497-512 (10.2478/aoas-2020-0079).
  6. Szczepkowska, Aleksandra; Harazin, András; Barna, Lilla; Deli, Mária A.; Skipor, Janina. Identification of reference genes for circadian studies on brain microvessels and choroid plexus samples isolated from rats. Biomolecules 2021, 11(8): art. no 1227 (1-19) (10.3390/biom11081227).
  7. Szczepkowska, Aleksandra; Wójcik, Maciej; Tomaszewska-Zaremba, Dorota; Antushevich, Hanna; Krawczyńska, Agata; Wiechetek, Wiktoria; Skipor, Janina; Herman, Andrzej P. Acute effect of caffeine on the synthesis of pro-inflammatory cytokines in the hypothalamus and choroid plexus during endotoxin-induced inflammation in a female sheep model. International Journal of Molecular Sciences 2021, 22(24): art. no 13237 (1-13) (10.3390/ijms222413237).

2020

  1. Fraser, Leyland; Paukszto, Łukasz; Mańkowska, Anna; Brym, Paweł; Gilun, Przemysław; Jastrzębski, Jan P.; Pareek, Chandra S.; Kumar, Dibyendu; Pierzchała, Mariusz. Regulatory potential of long non-coding RNAs (lncRNAs) in boar spermatozoa with good and poor freezability. Life-Basel 2020, 10(11): art. no 300 (1-26) (10.3390/life10110300).
  2. Szczepkowska, Aleksandra; Kowalewska, Marta; Krawczyńska, Agata; Herman, Andrzej P.; Skipor, Janina. Photoperiod affects leptin action on the choroid plexus in ewes challenged with lipopolysaccharide – study on the mRNA level. International Journal of Molecular Sciences 2020, 21(20): art. no 7647 (1-16) (10.3390/ijms21207647).

2019

  1. Herman, Andrzej P.; Skipor, Janina; Krawczyńska, Agata; Bochenek, Joanna; Wojtulewicz, Karolina; Pawlina, Bartosz; Antushevich, Hanna; Herman, Anna; Tomaszewska-Zaremba, Dorota. Effect of central injection of neostigmine on the bacterial endotoxin induced suppression of GnRH/LH secretion in ewes during the follicular phase of the estrous cycle. International Journal of Molecular Sciences 2019, 20(18): art. no 4598 (1-19) (doi: 10.3390/ijms20184598).
  2. Szczepkowska, Aleksandra; Kowalewska, Marta; Skipor, Janina. Melatonin from slow-release implants upregulates claudin-2 in the ovine choroid plexus. Journal of Physiology and Pharmacology 2019, 70(2): 249-254 (doi: 10.26402/jpp.2019.2.08).

2018

  1. Herman, Andrzej P.; Tomaszewska-Zaremba, Dorota; Kowalewska, Marta; Szczepkowska, Aleksandra; Oleszkiewicz, Małgorzata; Krawczyńska, Agata; Wójcik, Maciej; Antushevich, Hanna; Skipor, Janina. Neostigmine attenuates proinflammatory cytokine expression in preoptic area but not choroid plexus during lipopolysaccharide-induced systemic inflammation. Mediators of Inflammation 2018, 2018: art. no 9150207 (1-9) (doi: 10.1155/2018/9150207).
  2. Kościukiewicz, Kinga; Wylot, Bartosz; Czelejewska, Wioleta; Gilun, Przemysław D.; Okrasa, Stanisław. The effects of mu-, delta- and kappa-opioid receptor activation on in vitro prolactin secretion by anterior pituitary cells of cyclic gilts. Journal of Animal and Feed Sciences 2018, 27(2): 114-122 (doi: 10.22358/jafs/91395/2018).
  3. Koziorowska-Gilun, Magdalena; Gilun, Przemysław D.; Mietelska, Katarzyna; Kordan, Władysław. Determination of the activity and relative abundance of mRNA for antioxidant enzymes in stallion testicular and epididymal tissues: A comparison between two breeding seasons. Animal Reproduction Science 2018, 196: 230-238 (doi: 10.1016/j.anireprosci.2018.08.015).
  4. Szczepkowska, Aleksandra; Skowroński, Mariusz T.; Kowalewska, Marta; Milewski, Stanisław; Skipor, Janina. Effect of melatonin from slow-release implants on aquaporins (AQP1 and AQP4) in the ovine choroid plexus. Czech Journal of Animal Science 2018, 63(1): 32-42 (doi: 10.17221/6/2017-CJAS).

2017

  1. Herman, Andrzej P.; Skipor, Janina; Krawczyńska, Agata; Bochenek, Joanna; Wojtulewicz, Karolina; Antushevich, Hanna; Herman, Anna; Paczesna, Kamila; Romanowicz, Katarzyna; Tomaszewska-Zaremba, Dorota. Peripheral inhibitor of AChE, neostigmine, prevents the inflammatory dependent suppression of GnRH/LH secretion during the follicular phase of the estrous cycle. BioMed Research International 2017, 2017: art. no 6823209 (1-12) (doi: 10.1155/2017/6823209).
  2. Kowalewska, Marta; Herman, Andrzej P.; Szczepkowska, Aleksandra; Skipor, Janina. The effect of melatonin from slow-release implants on basic and TLR-4-mediated gene expression of inflammatory cytokines and their receptors in the choroid plexus in ewes. Research in Veterinary Science 2017, 113: 50-55 (doi: 10.1016/j.rvsc.2017.09.003).
  3. Kowalewska, Marta; Szczepkowska, Aleksandra; Herman, Andrzej P.; Pellicer-Rubio, Maria T.; Jałyński, Marek; Skipor, Janina. Melatonin from slow-release implants did not influence the gene expression of the lipopolysaccharide receptor complex in the choroid plexus of seasonally anoestrous adult ewes subjected or not to a systemic inflammatory stimulus. Small Ruminant Research 2017, 147: 1-7 (doi: 10.1016/j.smallrumres.2016.11.018).
  4. Koziorowska-Gilun, Magdalena; Gilun, Przemysław D.; Koziorowski, Marek; Kordan, Władysław. Expression of Hypoxia-Inducible Factor-1α and association with Cu/Zn superoxide dismutase in the reproductive tract tissues of adult male roe deer (Capreolus capreolus) during the reproduction season. Annals of Animal Science 2017, 17(4): 1063-1074 (doi: 10.1515/aoas-2017-0008).
  5. Kwiatkowska, Joanna; Wąsowska, Barbara; Gilun, Przemysław D. Expression of hypoxia inducible factor 1α and antioxidant enzymes: Superoxide dismutases-1 and -2 in ischemic porcine endometrium. Reproductive Biology 2017, 17(3): 289-293 (doi: 10.1016/j.repbio.2017.05.013).
  6. Skipor, Janina; Kowalewska, Marta; Szczepkowska, Aleksandra; Majewska, Anna; Misztal, Tomasz; Jałyński, Marek; Herman, Andrzej P.; Ząbek, Katarzyna. Plasma and cerebrospinal fluid interleukin-1β during lipopolysaccharide-induced systemic inflammation in ewes implanted or not with slow-release melatonin. Journal of Animal Science and Biotechnology 2017, 8: art. no 76 (1-8) (doi: 10.1186/s40104-017-0206-0).

2016

  1. Romerowicz-Misielak, Maria; Tabęcka-Łonczyńska, Anna; Kozioł, Katarzyna; Gilun, Przemysław; Stefańczyk-Krzymowska, Stanisława; Och, Waldemar; Koziorowski, Marek. Changes in gonadotropin-releasing hormone and gonadotropinreleasing hormone receptor gene expression after an increase in carbon monoxide concentration in the cavernous sinus of male wild boar and pig crossbreed. Journal of Physiology and Pharmacology 2016, 67(3): 431-442 (pdf).
  2. Szczepkowska, Aleksandra; Lagaraine, Christine; Robert, Vincent; Młynarczuk, Jarosław; Dufourny, Laurence; Thiéry, Jean-Claude; Skipor, Janina. PCB153 (2,2′,4,4′,5,5′-hexachlorobiphenyl) differentially affects the VEGF/VEGFR system depending on photoperiod in the ovine choroid plexus. Ecotoxicology and Environmental Safety 2016, 124: 303-308 (doi: 10.1016/j.ecoenv.2015.11.007).

2015

  1. Bochenek, Joanna; Skipor, Janina; Kowalewska, Marta; Herman, Andrzej P. The Toll-like receptors mRNA expression profile in the pineal gland of sheep during long and short days. Journal of Animal and Feed Sciences 2015, 24(3): 208-215 (doi: 10.22358/jafs/65626/2015).
  2. Herman, Andrzej P.; Bochenek, Joanna; Skipor, Janina; Król, Karolina; Krawczyńska, Agata; Antushevich, Hanna; Pawlina, Bartosz; Marciniak, Elżbieta; Tomaszewska-Zaremba, Dorota. Interleukin-1β modulates melatonin secretion in ovine pineal gland: ex vivo study. BioMed Research International 2015, 2015: art. no 526464 (1-10) (doi: 10.1155/2015/526464).
  3. Herman, Andrzej P.; Herman, Anna; Skipor, Janina; Krawczyńska, Agata; Bochenek, Joanna; Tomaszewska-Zaremba, Dorota. Caffeine stimulates in vitro pituitary LH secretion in lipopolysaccharide-treated ewes. Reproductive Biology 2015, 15(1): 20-26 (doi: 10.1016/j.repbio.2014.12.001).
  4. Koziorowska-Gilun, Magdalena; Fraser, Leyland; Gilun, Przemysław D.; Koziorowski, Marek; Kordan, Władysław. Activity of antioxidant enzymes and their mRNA expression in different reproductive tract tissues of the male roe deer (Capreolus capreolus) during the pre-rut and rut seasons. Small Ruminant Research 2015, 129: 97-103 (doi: 10.1016/j.smallrumres.2015.05.006).
  5. Krzymowski, Tadeusz; Stefańczyk-Krzymowska, Stanisława. New facts and the concept of physiological regulation of the dopaminergic system function and its disorders. Journal of Physiology and Pharmacology 2015, 66(3): 331-341 (pdf).
  6. Romerowicz-Misielak, Maria; Oren, Dan A.; Sowa-Kućma, Magdalena; Tabęcka-Łonczyńska, Anna; Gilun, Przemysław; Stefańczyk-Krzymowska, Stanisława; Koziorowski, Marek. Changes in melatonin synthesis parameters after carbon monoxide concentration increase in the cavernous sinus. Journal of Physiology and Pharmacology 2015, 66(4): 505-514 (pdf).
  7. Skipor, Janina; Szczepkowska, Aleksandra; Kowalewska, Marta; Herman, Andrzej P.; Lisiewski, Paweł. Profile of toll-like receptor mRNA expression in the choroid plexus in adult ewes. Acta Veterinaria Hungarica 2015, 63(1): 69-78 (doi: 10.1556/AVet.2014.027).
  8. Teixeira-Gomes, Ana-Paul; Harichaux, Gregoire; Gennetay, Dominique; Skipor, Janina; Thiery, Jean-Claude; Labas, Valerie; Dufourny, Laurence. Photoperiod affects the cerebrospinal fluid proteome: a comparison between short day- and long day-treated ewes. Domestic Animal Endocrinology 2015, 53: 1-8 (doi: 10.1016/j.domaniend.2015.04.003).
  9. Wiczkowski, Wiesław; Skipor, Janina; Misztal, Tomasz; Szawara-Nowak, Dorota; Topolska, Joanna; Piskuła, Mariusz K. Quercetin and isorhamnetin aglycones are the main metabolites of dietary quercetin in cerebrospinal fluid. Molecular Nutrition & Food Research 2015, 59(6): 1088-1094 (doi: 10.1002/mnfr.201400567).

2014

  1. Jablońska, Olga; Piasecka-Srader, Joanna; Nynca, Anna; Kołomycka, Agnieszka; Robak, Anna; Wąsowska, Barbara; Ciereszko, Renata E. 2,3,7,8-Tetrachlorodibenzo-p-dioxin alters steroid secretion but does not affect cell viability and the incidence of apoptosis in porcine luteinized granulosa cells. Acta Veterinaria Hungarica 2014, 62(3): 408-421 (doi: 10.1556/AVet.2014.015).
  2. Krzymowski, Tadeusz; Stefańczyk-Krzymowska, Stanisława; Muszak, Jolanta; Gilun, Przemysław D.; Koziorowski, Marek. Cavernous sinus and its mysterious physiological functions: facts and hypotheses. Acta Biologica Cracoviensia Series Zoologia 2014, 55-56: 7-15 (pdf).
  3. Muszak, Jolanta; Krzymowski, Tadeusz; Gilun, Przemysław; Stefańczyk-Krzymowska, Stanisława. Countercurrent transfer of dopamine from venous blood in the cavernous sinus to the arterial blood supplying the brain – the perfused rabbit head as an experimental model. Journal of Physiology and Pharmacology 2014, 65(5): 641-648 (pdf).
  4. Tabęcka-Łonczyńska, Anna; Gilun, Przemysław D.; Stefańczyk-Krzymowska, Stanisława; Koziorowski, Marek. Local transfer of testosterone and aromatase activity in the spermatic cord in wild boar/pig hybrids in short-daylight and long-daylight periods. Reproductive Biology 2014, 14(4): 282-288 (doi: 10.1016/j.repbio.2014.06.004).

2013

  1. Gilun, Przemysław D.; Stefańczyk-Krzymowska, Stanisława; Romerowicz-Misielak, Maria; Tabęcka-Łonczyńska, Anna; Przekop, Franciszek; Kosiorowski, Marek. Carbon monoxide-mediated humoral pathway for the transmission of light signal to the hypothalamus. Journal of Physiology and Pharmacology 2013, 64(6): 761-772 (pdf).
  2. Koziorowska-Gilun, Magdalena; Gilun, Przemysław D.; Fraser, Leyland; Koziorowski, Marek; Stefańczyk-Krzymowska, Stanisława; Kordan, Władysław. Antioxidant enzyme activity and mRNA expression in reproductive tract of adult male european bison (Bison bonasus, Linnaeus 1758). Reproduction in Domestic Animals 2013, 48(1): 7-14 (doi: 10.1111/j.1439-0531.2012.02015.x).
  3. Muszak, Jolanta. The impact of selected vasoactive factors on vascular functions. Polish Annals of Medicine – Rocznik Medyczny 2013, 20(2): 149-153 (doi: 10.1016/j.poamed.2013.09.001).
  4. Nynca, Anna; Nynca, Joanna; Wąsowska, Barbara; Kolesarova, Adriana; Kołomycka, Agnieszka; Ciereszko, Renata E. Effects of the phytoestrogen, genistein, and protein tyrosine kinase inhibitor-dependent mechanisms on steroidogenesis and estrogen receptor expression in porcine granulosa cells of medium follicles. Domestic Animal Endocrinology 2013, 44(1): 10-18 (doi: 10.1016/j.domaniend.2012.07.002).
  5. Szczepkowska, Aleksandra; Lagaraine, Christine; Robert, Vincent; Dufourny, Laurence; Thiery, Jean-Claude; Skipor, Janina. Effect of a two-weeks treatment with low dose of 2,2’,4,4’,5,5’ hexachlorobiphenyl (PCB153) on tight junction proteins expression in ovine choroid plexus during long and short photoperiod. Neurotoxicology and Teratology 2013, 37: 63-67 (doi: 10.1016/j.ntt.2013.03.061).

2012

  1. Grzegorzewski, Waldemar J.; Muszak, Jolanta; Wąsowska, Barbara; Jana, Barbara; Stefańczyk-Krzymowska, Stanisława. The influence of steroids on noradrenaline-mediated contractile reactivity of the superficial nasal and facia veins in cycling gilts. Polish Journal of Veterinary Sciences 2012, 15(2): 297-304 (doi: 10.2478/v10181-011-0147-z).
  2. Koziorowski, Marek; Stefańczyk-Krzymowska, Stanisława; Tabęcka-Łonczyńska, Anna; Gilun, Przemysław D.; Kamiński, Marian. The gaseous messenger carbon monoxide is released from the eye into the ophthalmic venous blood depending on the intensity of sunlight. Journal of Biological Regulators and Homeostatic Agents 2012, 26(1): 111-118.
  3. Krzymowski, Tadeusz; Stefańczyk-Krzymowska, Stanisława. Advances in understanding the physiological mechanism of maternal immune tolerance to the embryo. Reproductive Biology 2012, 12(3): 265-270 (doi: 10.1016/j.repbio.2012.10.004).
  4. Krzymowski, Tadeusz; Stefańczyk-Krzymowska, Stanisława. Local retrograde and destination transfer of physiological regulators as an important regulatory system and its role. Facts and hypothesis. Journal of Physiology and Pharmacology 2012, 63(1): 3-16 (pdf).
  5. Skipor, Janina; Misztal, Tomasz; Piskuła, Mariusz K.; Wiczkowski, Wiesław; Thiery, Jean-Claude. Phytoestrogens and thyroid hormone levels in the cerebrospinal fluid of ewes fed red clover silage. Small Ruminant Research 2012, 102(2-3): 157-162 (doi: 10.1016/j.smallrumres.2011.07.012).
  6. Skipor, Janina; Młynarczuk, Jarosław; Szczepkowska, Aleksandra; Lagaraine, Christine; Grochowalski, Adam; Guillame, Daniel; Dufourny, Laurence; Thiery, Jean-Claude. Photoperiod modulates access of 2,2’,4,4’,5,5’-hexachlorobiphenyl (PCB153) to the brain and its effect on gonadotropin and thyroid hormones in adult ewes. Ecotoxicology and Environmental Safety 2012, 78: 336-343 (doi: 10.1016/j.ecoenv.2011.11.042).
  7. Stefańczyk-Krzymowska, Stanisława; Wąsowska, Barbara; Gilun, Przemysław D.; Muszak, Jolanta; Grzegorzewski, Waldemar J. Relationship between contractions of the uterus and concentration of PGF2α in uterine venous blood after luteolysis in gilts. Reproduction in Domestic Animals 2012, 47(1): 98-104 (doi: 10.1111/j.1439-0531.2011.01807.x).
  8. Szczepkowska, Aleksandra; Młynarczuk, Jarosław; Grochowalski, Adam; Dufourny, Laurence; Thiery, Jean-Claude; Skipor, Janina. Effect of two-week treatment with low dose of ortho-substituted polychlorinated biphenyls (PCB104) and PCR153) on VRGF-receptor system expression in the choroid plexus in adult ewes. Polish Journal of Veterinary Sciences 2012, 15(4): 621-628 (doi: 10.2478/v10181-012-0098-z).
  9. Szczepkowska, Aleksandra; Wąsowska, Barbara; Gilun, Przemysław D.; Lagaraine, Christine; Robert, Vincent; Dufourny, Laurence; Thiery, Jean-Claude; Skipor, Janina. Pattern of expression of vascular endothelial growth factor and its receptors in ovine choroid plexus during long and short photoperiod. Cell and Tissue Research 2012, 350(1): 157-166 (doi: 10.1007/s00441-012-1431-7).

Czytaj więcej

Współpraca międzynarodowa ZLRF

  1. Laboratory of Physiology of Reproduction and Behavior, French National Institute of Agricultural Research (INRA), French national Center for scientific Research (CNRS), Francois Rabelais University of Tours and National Studs, Nouzilly, France (Dr Jean-Claude THIERY and Dr Laurence DUFOURNY);
  2. Research Unit for Animal Life Sciences, Graduate School of Agricultural and Life Sciences, The University of Tokyo, Japan (Prof. Noboru MANABE);
  3. Institute of Biophysics, Biological Research Centre Hungarian Academy of Sciences in Szeged, Hungary (Dr. Maria DELI);
  4. Evestra Inc., San Antonio, USA.

Czytaj więcej

Najważniejsze osiągnięcia naukowe ZLRF

Główne osiągnięcia zakładu dotyczą wyjaśnienia fizjologicznych mechanizmów lokalnej i centralnej regulacji czynności rozrodczych samicy opartej na:

  • modulowanym przez czynniki środowiska funkcjonowaniu barier mózgowia regulujących dostęp hormonów tarczycy i leptyny do ośrodkowego układu nerwowego;
  • zwrotnym transferze neurohormonów i lokalnie docelowym transferze feromonów w okołoprzysadkowym kompleksie naczyniowym;
  • zwrotnym lub lokalnie docelowym transferze hormonów jajnikowych i regulatorów wytwarzanych w macicy.

Na poziomie ośrodkowego układu nerwowego:

  1. Wykazano wpływ fotoperiodu na ekspresję w komórkach splotu naczyniówkowego (choroid plexus) transtyretyny (białka transportującego hormony tarczycy przez barierę krew-płyn mózgowo-rdzeniowy) oraz na stężenie tych hormonów w komórkach wyściełających III komorę mózgu u owiec. Określono po raz pierwszy stężenie hormonów tarczycy w płynie mózgowo-rdzeniowym u owiec. Wykazano brak korelacji między stężeniem tych hormonów w krwi i płynie mózgowo-rdzeniowym zarówno w okresie sezonu rozrodczego jak i sezonowego anestrus;
  2. Wykazano wpływ sezonu na poziom ekspresji krótkiej formy receptora leptyny OB-Ra (transportującego) w splocie naczyniówkowym komór mózgu świni, co sugeruje zależną od sezonu dostępność tego hormonu do osi neuro-endokrynnej;
  3. Wykryto zależne od fazy cyklu rujowego i sezonu rozrodczego przenikanie neurohormonów (LH-RH, oksytocyna, beta-endorfina, dopamina) z krwi żylnej odpływającej z mózgu i przysadki do krwi tętniczej oraz ich zwrotny transfer do tych narządów. Zwrotny transfer LH-RH jest regulowany przez estradiol i LH;
  4. Wykryto humoralną drogę przekazu sygnału chemicznego steroidowego feromonu knura androstenolu z błony śluzowej nosa do obszarów mózgu związanych z regulacją procesów rozrodczych samicy i do przysadki. Wykazano wpływ androstenolu na uwalnianie LH-RH oraz wpływ androstenolu podawanego domięśniowo na osiąganie dojrzałości płciowej i na regulację hormonalną okresu okołorujowego u loszek z doświadczalną hypoosmią;
  5. Wykryto, że z działaniem androstenolu drogą humoralną związane są funkcje powierzchownych naczyń żylnych nosa i twarzy wykazujących reaktywność na steroidowe feromony knura i hormony steroidowe jajnika.

Na poziome narządów rozrodczych:

  1. Wykazano, że lokalny transfer jajnikowych hormonów steroidowych w okołojajnikowym kompleksie naczyniowym z odpływającej z jajnika krwi żylnej i limfy do krwi tętnicy jajnikowej podnosi ich stężenie we krwi zaopatrującej jajnik o 80-150% oraz jajowód i macicę o 22-60%;
  2. Wykazano regulacyjne działanie progesteronu przenoszonego zwrotnie do jajnika na funkcje sekrecyjne jajnika:
    • dodatnie sprzężenie zwrotne między progesteronem docierającym do jajnika a jego własną sekrecją,
    • dodatni wpływ progesteronu na sekrecję androstendionu i aktywiny A’,
    • ujemny wpływ progesteronu na sekrecję estradiolu;
  3. Wykazano że infuzja oksytocyny do tętnicy macicznej w 17 dniu cyklu rujowego u świni powoduje skurcze macicy, którym towarzyszy wzrost stężenia PGF2alfa we krwi odpływającej z macicy. Sugeruje to że pulsacyjne wzrosty stężenia PGF2alfa w żylnej krwi macicznej po luteolizie (w okresie cyklicznej przebudowy endometrium, przy obniżonej ekspresji syntazy PGF2alfa) są efektem jej usuwania z krwią żylną i limfą w wyniku narastających w tym czasie skurczów macicy;
  4. Wykazano że lokalnie docelowy transfer PGE2 do jajnika bierze udział w regulacji czynności sekrecyjnych jajnika a tym samym wpływa na przepływ krwi w naczyniach zaopatrujących narządy rozrodcze i uczestniczy w regulacji cyklicznych funkcji tych narządów;
  5. Wykazano reaktywność gałązek tętnicy macicznej (obszar krezki macicy) i tętnicy jajnikowej (obszar krezki jajnika) na PGE2 zależną od fazy cyklu rujowego lub ciąży i reaktywność tych naczyń na PGF2alfa niezależną od stadium funkcji rozrodczych.

Opracowano i opublikowano oryginalną, własną teorią, wyjaśniającą mechanizmy regulacji cyklu rujowego u zwierząt, ze szczególnym uwzględnieniem wpływu niedokrwienia endometrium na przebieg cyklu rujowego.

Czytaj więcej