1. Opracowano linie mlecznych napojów fermentowanych o unikatowej recepturze.
2. Potwierdzono hipotezę o immunogenności białek drobnoustrojowych izolowanych z komensalnych, probiotycznych i technologicznie stosowanych szczepów  Lactobacillus.
3. Udowodniono różnicujący wpływ procesu trawienia na profil i immunogenność białek drobnoustrojów w kontekście ich potencjału uwrażliwiającego.
4. Udowodniono różnicujący wpływ składu lipidów, jako dodatku do matrycy stosowanej do hodowli szczepów bakterii fermentacji mlekowej, na profil i immunogenność białek drobnoustrojów.
5. Wskazano na potrzebę wprowadzenia nowego kryterium w ocenie bezpieczeństwa żywności bazującego na badaniach immunoreaktywności białek drobnoustrojów.
6. Wykazano, że surowice ludzkie osób uczulonych na białka mleka krowiego mogą reagować z białkami mleka klaczy na poziomie przeciwciał IgE i IgG, co wskazuje na możliwość wystąpienia reakcji krzyżowych.
7. Wykazano, że sieciowanie białek mleka mikrobiologiczną transglutaminazą powodowało obniżenie immunoreaktywności β-laktoglobuliny i podwyższenie immunoreaktywności α-kazeiny z surowicami pozyskanymi od myszy.
8. Został wyłoniony szczep bakterii (L. acidophilus ACD-1), który wykazuje znaczną zdolność obniżania reaktywności białek mleka klaczy z przeciwciałami IgE pochodzącymi z surowicy pacjentów z alergią na białka mleka krowiego.
9. Stwierdzono, że mleko klaczy poddane fermentacji szczepem L. plantarum 110 wykazuje niską reaktywności IgG z surowicami pacjentów z alergią na białka mleka krowiego.
10. Kwas fitynowy w obecności kwasu masłowego (metabolitu bakterii jelitowych) pobudza procesy śmierci komórkowej kolonocytów nowotworowych, natomiast w kolonocytach zdrowych inicjuje szlaki regeneracji.
11. Hydrolizat kwasu fitynowego obniża nadmierną reakcję prozapalną nowotworowych kolonocytów na bakterie jelitowe, pozostaje jednocześnie neutralny podczas odpowiedzi immunologicznej kolonocytów zdrowych.
12. Wykazano zwiekszoną immunoreaktywność  białek mleka beta-laktoglobuliny i alfa-laktoalbuminy po procesie termizacji.
13. Glikacja owoalbuminy i beta-laktoalbuminy moduluje profil limfocytów T.
14. Wybrane preparaty probiotyczne obniżają odpowiedź humoralną do beta-laktoglobuliny mleka krowiego i modulują profil komórek immunokompetentnych.
15. Wykazano efekt terapeutyczny szczepu S. thermophilus MK-10 and L. bulgaricus 151 na stan zapalny jelita indukowany w modelu mysim poprzez oddziaływanie na mikrobiotę jelitowa i modulację profilu komórek T.

Czytaj więcej

1. „Jogurt z Ogrodu” z dodatkiem miodu i liofilizowanych ziół. „Inkubator Innowacyjności 4.0” ustanowiony przez MNISW i finansowany ze środków europejskich w ramach projektu „Wsparcie zarządzania badaniami naukowymi i komercjalizacja wyników prac B+R w jednostkach naukowych i przedsiębiorstwach” w ramach Programu Operacyjnego Inteligentny Rozwój 2014-2020 (Działanie 4.4). Nr. MNISW/2020/318/DIR –  lider zadania dr Anna Ogrodowczyk.
2. Rola lipidów matrycy mleka w programowaniu immunoreaktywności białek pochodzących z bakterii kwasu mlekowego.” Nr. 2021/43/D/NZ9/02814; (NCN; SONATA 17) – lider projektu dr Anna Ogrodowczyk.
3. Wpływ symulowanych warunków trawienia na zmiany w profilu i immunoreaktywności białek bakterii z rodzaju Lactobacillus. Nr. G KNOW31. Wsparcie: Konsorcjum KNOW „Zdrowe zwierzę – bezpieczna żywność” –  lider zadania dr Anna Ogrodowczyk.
4. Ocena właściwości immunomodulujących zewnątrzkomórkowych czynników wydzielanych przez bakterie kwasu mlekowego. Nr. G KNOW Granty na Granty. Wsparcie: Konsorcjum KNOW „Zdrowe zwierzę – bezpieczna żywność” – lider zadania dr Anna Ogrodowczyk.
5. Wpływ szczepu bakterii probiotycznych Lactobacillus rhamnosus GG na aktywność komórek dendrytycznych myszy z indukowanym stanem nadwrażliwości na β-laktoglobulinę mleka krowiego (β-lg). Nr. G KNOW40. Wsparcie: Konsorcjum KNOW „Zdrowe zwierzę – bezpieczna żywność” – dr hab.inż. Dagmara Zlotkowska.
6. Modyfikowane białka żywności i probiotyki – wpływ na aktywność regulatorowych komórek T i komórek dendrytycznych. Nr. G KNOW11. Wsparcie: Konsorcjum KNOW „Zdrowe zwierzę – bezpieczna żywność”. Kierownik projektu – dr hab.inż. Dagmara Złotkowska.
7. Modulacja odpowiedzi układu immunologicznego śluzówki przewodu pokarmowego porzez indukcję komórek regulatorowych poprzez podawanie natywnych i zglikowanych alergenów pokarmowych owoalbuminy i beta laktoglobuliny razem z probiotykami. Wsparcie NCN; GRANT NUMBER 2011/01/B/NZ9/02727.Kierownik projektu – dr hab.inż. Dagmara Złotkowska.
8. Ocena bezpieczeństwa i aktywności prozdrowotnej własnych i komercyjnych preparatów probiotycznych: badania modelowe na zwierzętach z indukowanym stanem zapalnym okrężnicy. Wsparcie NCN; GRANT NUMBER 2011/01/B/NZ9/07136. Kierownik projektu dr Ewa Wasilewska.
9. Wpływ fosforanów inozytolu i mikrobioty jelitowej na funkcje zdrowych i nowotworowych komórek nabłonkowych jelita grubego. Projekt NCN nr DEC-2013/11/D/NZ9/02783. Kierownik: dr Lidia Markiewicz
10. MicrobiomeSupport – “Towards coordinated microbiome R&I activities in the food system to support (EU and) international bioeconomy goals”, Horizon 2020 CSA (Coordination and Support Action) projekt No 818116, 2018-2022. Przedstawiciel krajowy: dr. Lidia Markiewicz.
11. C-SNIPER: Redukcja Campylobacter poprzez zastosowanie fagów specyficznych dla enteropatogenu. Projekt EIT Food, 2020-2021, kierownik zadania realizowanego w IRZiBŻ PAN – dr Lidia Markiewicz.
12. “#Annual Food Agenda” (Projekt Europejskiego Instytutu Innowacji i Technologii EIT FOOD, Nr. 19169-21 (21105) – wykonawca- dr Joanna Fotschki, dr Anna Ogrodowczyk.
13. C-SNIPER: Redukcja Campylobacter poprzez zastosowanie fagów specyficznych dla enteropatogenu. Projekt EIT Food, 2020-2021, kierownik zadania realizowanego w IRZiBŻ PAN – dr Lidia Markiewicz, wykonawca- dr Anna Ogrodowczyk.
14. V-PLACE: Umożliwienie konsumentom wyboru produktów wegańskich lub wegetariańskich– Projekt EIT Food, 2020-2021, wykonawca- dr Anna Ogrodowczyk, Prof. Barbara Wróblewska.
15. SPIN: SPermidyna i Eugenol zintegrowane działania w zmniejszaniu zachorowalności na koronawirusa w populacji UE, EIT FOOD, 2020, kierownik zadania – dr Anna Ogrodowczyk, dr hab.inż. Dagmara Złotkowska (wykład).
16. Classroom: jako platforma zaangażowania społeczności w produkcję żywności i naukę. Projekt EIT Food, 2020-2021,  wykonawca- dr Anna Ogrodowczyk, dr hab.inż. Dagmara Złotkowska.
17. Szkolene na temat Ukierunkowanego Żywienia „RIS Fall School in Targeted Nutrition” Projekt EIT Food, 2021,  wykonawca- dr Anna Ogrodowczyk.
18. „Wpływ szczepów Lactobacillus i transglutaminazy na immunoreaktywność beta-laktoglobuliny i alfa-kazeiny mleka klaczy” (Projekt Narodowego Centrum Nauki, NCN, Preludium 9, Nr.  2015/17/N/NZ9/03666) – kierownik projektu dr Joanna Fotschki.
19. „CHAMPP: Współczesne wyzwania i problemy w produkcji drobiarskiej” (EIT FOOD) – lider projektu dr Joanna Fotschki.
20. „InformPack: Development of public engagement actions, tools and strategies to enable a sustainable shift in food packaging culture in Europe” (Projekt Europejskiego Instytutu Innowacji i Technologii EIT FOOD, Nr.22205) – główny wykonawca dr Joanna Fotschki.
21. “#Annual Food Agenda” (Projekt Europejskiego Instytutu Innowacji i Technologii EIT FOOD, Nr. 19169-21 (21105) – wykonawca dr Joanna Fotschki.
22. „Immunomodulujące właściwości przefermentowanego napoju serwatkowego wzbogaconego sokiem z aronii oraz kolostrum” Projekt NCN, Preludium Bis 3, No. 2021/43/O/NZ9/00957, Kierownik projektu: prof. dr hab. Barbara Wróblewska.
23. COST Action FA1402 ImpARAS – Poprawa strategii oceny ryzyka alergii dla nowych białek spożywczych – przedstawiciel krajowy: prof. Barbara Wróblewska.
24. COST Action CA18113 – Zrozumienie i wykorzystanie wpływu niskiego pH na mikroorganizmy – przedstawiciel krajowy: prof. Barbara Wróblewska.
25. COST Action FA1005 INFOGEST – Poprawa właściwości zdrowotnych żywności poprzez wymianę wiedzy na temat procesu trawienia- przedstawiciel krajowy: dr Dominika Świątecka.
26. COST Action PIMENTO CA20128 – Promowanie innowacyjności żywności fermentowanej, 2021-2025, przedstawiciel krajowy: dr Lidia Markiewicz.

Czytaj więcej

Metody badawcze

1. Metody in vivo

• pomiar prędkości przepływu krwi w tętnicy macicznej świni z zastosowaniem elektromagnetycznego transducera (elektromagnetic flowmeter RT500 Narcomatic) w znieczuleniu ogólnym
• pomiar ciśnienia wewnątrzmacicznego/pośrednio aktywności skurczowej macicy świni (Bridge Amp AD Instruments) w znieczuleniu ogólnym
• metody biotechniki rozrodu u owiec: synchronizacja owulacji owiec (gąbki dopochwowe) i przyspieszanie sezonu rozrodczego (implanty melatoniny) do celów doświadczalnych
• laparotomia pośrodkowa świń i owiec: owariektomia, histerektomia, wywoływanie ischemii macicy przez zamknięcie tętnicy macicznej świni, przyżyciowe pobieranie skrawków macicy, implantowanie kaniul do naczyń krwionośnych krezki macicy świni w celu wielogodzinnego pobierania krwi i/lub infuzji substancji biologicznie aktywnych (np. hormonów) w znieczuleniu ogólnym
• implantowanie kaniul do naczyń krwionośnych głowy i szyi u świni, owcy, królika w znieczuleniu ogólnym
• długotrwałe (12-godzinne) pobieranie płynu mózgowo-rdzeniowego z III komory mózgu u owiec
• długotrwałe pobieranie krwi z żyły szyjnej zewnętrznej u świń i owiec
• ciągłe monitorowanie saturacji krwi tlenem oraz nasycenie wydychanego powietrza dwutlenkiem węgla przy zastosowaniu pulsoksymetru z detektorem CO₂ (Nonin Medical Inc.9847V) w znieczuleniu ogólnym

2. Metody ex vivo

• badania aktywności skurczowej żył powierzchownych głowy świni (żyły czołowa, nosowa, twarzowa)
• badania aktywności skurczowej izolowanych tętnic układu rozrodczego samicy świni (tętnica maciczna)
• badania na izolowanej głowie świni, owcy, królika perfundowanej autologiczną krwią
• badania na izolowanym jajniku, macicy (świni), jadrze (świnia, szczur) perfundowanych autologiczną krwią

3. Inkubacje tkankowe

• skrawki podwzgórza świni

4. Metody analitycze

4.1 Metody biologii molekularnej

Ekspresja na poziomie mRNA metodą Real Time PCR (qPCR) lub Real Time PCR z zastosowaniem sondy (qPCR TaqMan) oraz białka metodą western-blot (WB):

• czynniki związane z produkcją płynu mózgowo-rdzeniowego: VEGF, jego receptory Flt-1, Flk-1 i koreceptor NRP-1, akwaporyna-1,  akwaporyna-4, klaudyna-2 (qPCR, WB) w splocie naczyniówkowym komór mózgu u owiec
• białka połączeń zamykających limitujących przechodzenie substancji na drodze międzykomórkowej: białka błonowe okludyna, klaudyna-1 i JAM-1 oraz białka cytozolowe ZO-1, ZO-2, ZO-3 i afadyna-6 (qPCR, WB) w splocie naczyniówkowym komór mózgu u owiec
• białka transporterowe: transtyretyna (TTR) w splocie naczyniówkowym komór mózgu u owiec (qPCR)
• kompleks receptora lipopolisacharydu (LPS): receptor toll-podobny 4 (TLR4), CD14 i  MD-2 (qPCR) w splocie naczyniówkowym komór mózgu u owiec
• cytokiny i ich receptory oraz chemokiny: TNFα, IL-1β, IL-6, TNFRI, TNFRII, IL-1R1, IL-1R2, IL-6R, gp130, MCP-1 (qPCR) w splocie naczyniówkowym komór mózgu u owiec
• metaloproteinazy i ich inhibitory: MMP2, MMP3, MMP9, TIMP-1 i TIMP-3 (qPCR) w splocie naczyniówkowym komór u owiec
• marker hipoksji HIF-1α w macicy świni (qPCR, WB)
• białka zegara biologicznego w podwzgórzu świni domowej: BMAL 1, CLOCK, NPAS2, PER 1-3, CRY 1-2 (qPCR TaqMan, WB)
• receptory jądrowe powiązane z funkcjonowaniem molekularnego zegara biologicznego w podwzgórzu świni domowej: REV-ERB α, REV-ERB β, ROR α, ROR β, ROR γ – (qPCR TaqMan)
• enzymy antyoksydacyjne w jądrach i najądrzach samca sarny oraz żubra: EcSOD, GpX 4 i GpX 5 (qPCR), SOD-1, Cat (qPCR, WB) oraz SOD-1, SOD-2 w macicy świni (qPCR)
• receptor leptyny (Ob-Ra i Ob-Rb) w splocie naczyniówkowych komór mózgu oraz w podwzgórzu świni domowej (qPCR, WB)

4.2 Immunoenzymatyczne oznaczanie stężeń w osoczu (ELISA):

• LPS Binding Protein u owiec
• IL-6 u owiec

4.3 Immunoizotopowe oznaczanie stężeń (RIA) w osoczu, tkankach, płynach ustrojowych:

• hormonów tarczycy: T3 i T4 (wolne i całkowite)
• melatonina
• hormonów związanych z funkcjonowaniem układu rozrodczego: estradiol, estron, progesteron, testosteron, oksytocyna, prostaglandyna F2α świni
• hormonów białkowych: prolaktyna (PRL), luteotropina (LH), folikulotropina (FSH), aktywina A i leptyna świni

4.4.Radioizotopowe znakowanie hormonów

• Jodowanie (J¹²⁵) oksytocyny, GnRH, FSH, LH, prolaktyny, β-endorfiny

4.5 Immunohistochemiczna lokalizacja (z zastosowaniem fluorochromów):

• białka c-Fos, produktu genu wczesnej odpowiedzi komórkowej, w strukturach mózgu świni
• NADPH-diaforazy (metodą histochemiczną) w naczyniach krwionośnych mózgu świni
• syntaz tlenku azotu iNOS, eNOS w macicy oraz okołojajnikowym kompleksie naczyniowym świni, w jelicie grubym szczura
• endogennego markera hipoksji HIF-1α w macicy i jajowodach świni
• enzymów antyoksydacyjnych SOD-1, SOD-2 w narządach układu rozrodczego samicy świni, jelicie grubym myszy
• czynnika wzrostu śródbłonka naczyń VEGF oraz jego receptorów Flt-1, Flk-1 w splocie naczyniówkowym komór mózgu owcy białka antyapoptotycznego cFLIP w narządach układu rozrodczego samicy świni
• komórek apoptotycznych metodą TUNEL (Terminal Transferase dUTP Nick End Labeling) w macicy świni, jelicie grubym szczura
• enzymu hydroksylazy dopaminowej (DβH) w naczyniach krwionośnych głowy (żyła twarzowa, nosowa, czołowa) oraz okołojajnikowego kompleksu naczyniowego świni
•  receptora leptyny w splocie naczyniówkowym mózgu oraz w podwzgórzu świni
• receptora TLR4 (toll-like receptor) oraz CD14 w splocie naczyniówkowym komór mózgu owcy

4.6 Analiza gęstości optycznej wyrażonej w jednostkach densytometrycznych

• pomiary intensywności reakcji barwnej obserwowanej w mikroskopie z zastosowaniem programu Axio Vision Rel. 4.8.2

Wykaz aparatury

1. Urządzenia stosowane w doświadczeniach in vivo, ex vivo:

• Aparat do narkozy wziewnej dla dużych zwierząt (KOMESAROFF MINI-KOM)
• Kardiomonitor (TEMED)
• Pulsoksymetr z detektorem CO2 (Nonin Medical Inc. 9847V)
• Zestaw do badań na izolowanych narządach (UNIPER, UP-100; Hugo Sachs Elektronik-Harvard)
• Zestaw do badań na izolowanych naczyniach i mięśniówce gładkiej (HSE F30, type 372; Hugo Sachs Elektronik)
• Pompy infuzyjne
• Pompy perystaltyczne (Elphan, ZALIMP)
• Urządzenie do pomiaru przepływu krwi z transducerami (Narcomatic)
• Wiertarka chirurgiczna (Eskulap)

2.    Sprzęt laboratoryjny stosowany w analizie western blot:

• Aparat do elektroforezy białek-pionowa (BIO-RAD PowerPac, Invitrogen)
• Aparat do mokrego transferu (BIO-RAD PowerPac)
• Mieszadło hematologiczne (Chemland)

3.    Sprzęt laboratoryjny stosowany w analizie kwasów nukleinowych:

• Komora z przepływem laminarnym (Polon)
• Aparat do elektroforezy kwasów nukleinowych-horyzontalna (BIO-RAD PowerPac)

4.    Sprzęt laboratoryjny stosowany w analizach RIA:

• Licznik do pomiaru promieniowania gamma (LKB)
• Licznik do pomiaru promieniowania beta (Beckman)
• Radiometr Rust-3 z sondą

5.    Podstawowy sprzęt laboratoryjny:

• Aparat próżniowy BioVac 225 (OmegaLab)
• Spektrofotometr (Beckman)
• Mikroskop stereoskopowy
• Mikroskop MBL 180T
• Termoblok (OmegaLab)
• Worteksy (Biosan)
• Wytrząsarki (Biosan)
• Wytrząsarka z komorą inkubacyjną (Edmund Bűhler)
• Mieszadła magnetyczne (Biosan, IKA WERKE)
• Łaźnia wodna z przykrywką (Pracowania elektroniki i aparatury elektronicznej)
• pH-metr stacjonarny (HANNA instruments)
• Wirówki (Biosan, StarLab)
• Wirówka z chłodzeniem (Beckam,MPW Med. Instruments)
• Wagi elektroniczna (RADWAG, MEDICAT LTD)
• Ultrazamrażarka (SANYO)
• Wyciąg chemiczny (Polon)
• Wytwornica lodu (Scotsman)
• Aparat Hamilton Microlab 1000

Czytaj więcej

Przygotowanie materiału do badań:

• Izolacja komórek: ciałka żółtego, myometrium, endometrium, nabłonka jajowodu
• Hodowle komórek i skrawków: inkubator (Memmert, Niemcy)

Metody analityczne i pomiarowe:

• Ocena przeżywalności komórek (test cytotoksyczności): czytnik ELISA (Multiscan EX, Labsystems, Finlandia)
• Enzymoimmunologiczne oznaczanie hormonów steroidowych, białkowych i prostaglandyn (czytnik ELISA, Multiscan EX,Labsystems)
• Klasyczna technika PCR i jej modyfikacje: RT-PCR, nested-PCR, touchdown PCR (system dokumentacji żeli MiniBIS Pro)
• Pomiar zmian ekspresji genów metodą RT PCR i Real-time PCR:
• izolacja RNA, (spektrofotometr BioPhotometr, Eppendorf, oraz spektrofotometr Nonodrop)
  • odwrotna transkrypcja, PCR (termocykler MJ Mini BioRad)
  • system detekcji dla Real-time PCR (APB Prism 7300 Applied Biosystems, USA)
  • system do analizy obrazu MiniBIS Pro (DNR Bio Imaging System, Israel)
• 5’ i 3’ RACE PCR – szybka amplifikacja końców cDNA
• Pomiar ilości białka metodą Western Blot: Mini PROTEAN 3 System (system dokumentacji żeli MiniBIS Pro).
• Pomiar mobilizacji wewnątrzkomórkowych jonów Ca2+ z wykorzystaniem barwnika fluorescencyjnego Fura 2 (mikroskop Nikon Eclipse TS 100 z oprogramowaniem do analizy NIS-Elements Basic Research),
• Immunohistochemia (kriostat, analiza obrazu – mikroskop Imager Z1-Zeiss z oprogramowaniem Axio Vision 4.8).
• Pomiar aktywności motorycznej (kurczliwości) skrawków myometrium i jajowodu: tensometr (Hugo Sachs Elektronik, Niemcy – urządzenie na stanie ZLRF)
• Oznaczanie katecholamin metodą HPLC z detekcją elektrochemiczną (Hewlett-Packard, Series 1050)

Czytaj więcej

Metody badawcze

1. Oznaczanie zawartości hormonów i prostaglandyn metodą RIA i EIA;
2. Izolacja i hodowla:
   • komórek błony śluzowej macicy świni,
   • komórek błony mięśniowej macicy,
   • komórek śródbłonka naczyń,
   • komórek nabłonkowych jajowodu,
   • komórek lutealnych,
   • komórek granulozy,
   • komórek trofoblastu,
   • komórek przysadki,
3. Pozyskiwanie, hodowla in vitro, kriokonserwacja oraz transfer niechirurgiczny zarodków świni;
4. Barwienia i analiza histologiczna tkanek i narządów układu rozrodczego;
5. Barwienia immunohistochemiczne i immunofluorescencyjne;
6. Skaningowa i transmisyjna mikroskopia elektronowa;
7. Analiza Western blot;
8. Izolacja i oczyszczanie kwasów nukleinowych;
9. Analiza jakościowa i ilościowa DNA i RNA;
10. Badanie ekspresji genów metodą real-time PCR;
11. Analiza Southern blot;
12. Transfekcje komórek wektorami plazmidowymi.

Czytaj więcej

Metody badawcze

1. Metody in vivo:
   • metody biotechniki rozrodu świń i krów: synchronizacja rui, superowulacja, inseminacja;
   • ultrasonograficzna (USG) diagnostyka narządów rodnych świni, krowy i klaczy;
   • laparotomia świń i krów: kaniulacja naczyń krwionośnych układu rodnego; mikrodializa ciałek żółtych i innych struktur narządu rodnego;
   • przyżyciowe pozyskiwania jajników i ciałek żółtych krów (poprzez laparotomię lub kolpotomię);
   • biopsje błony śluzowej macicy krowy i klaczy.
2. Metody in vitro:

   Izolacja enzymatyczna i hodowle komórkowe:

   • komórki nabłonka i tkanki łącznej błony śluzowej macicy świni, krowy, klaczy i kotki,
   • komórki steroidogenne ciałka żółtego krowy, klaczy i kotki,
   • komórki warstwy ziarnistej pęcherzyka jajnikowego krowy,
   • komórki śródbłonka naczyń  krwionośnych ciałka żółtego i błony śluzowej macicy krowy, klaczy i kotki,
   • komórki nabłonkowe zatoki mlekonośnej wymienia krowy,
   • hodowla komórek adherentnych i zawiesinowych,
   • transfekcja komórek.

   Inkubacje tkankowe:

   • skrawki błony śluzowej macicy świni, krowy, klaczy i kotki,
   • skrawki ciałka żółtego świni, krowy i klaczy,
   • skrawki zatoki mlekonośnej wymienia krowy.

   Metody wirusologiczne:

   • izolacja, koncentracja i przygotowanie stocków wirusa,
   • test infekcyjności (określanie współczynnika zakażenia – MOI – multiplicity of infection).
3. Metody analityczne

   3.1  Metody biologii molekularnej:

   • ekspresja czynników pro- i antyapaptotycznych ( TNFα, IFNγ, IL-1α, Il-6, FasL, BCL2, BAX, Caspase3, Caspase8) i ich receptorów,
   • ekspresja enzymów szlaku steroidogenezy (3β-HSD, StAR, CYP450),
   • ekspresja enzymów szlaku metabolizmu kwasu arachidonowego:
     • szlak powstawania leukotrienów (5-LOX) i ich receptorów
     • szlak powstawania prostaglandyn (PTGS-2, PGES, PGFS, 9KPGR, AKR1B5)
   • ekspresja enzymów związanych z syntezą kwasu lizofosfatydowego (PLD i PLA2) i jego receptorów (LPA1, LPA2, LPA3, LPA4),
   • ekspresja oksytocyny i  jej receptora,
   • ekspresja czynnika wzrostu nerwów i jego receptorów (TrkA, p75) na poziomie mRNA metodą RT Real Time PCR i semiquantitative RT PCR oraz białka metodą Western-blot,
   • klonowanie/PCR (np. genów wirusowych),
   • Western blot (np. badanie ekspresji wirusowych białek litycznych i latentnych),
   • Southern blot,
   • electromobility shift assay (EMSA) –np. wiązanie się białka wirusa do sekwencji pochodzących z genomu wirusa.

   3.2  Immunoizotopowe oznaczanie (RIA) stężeń:

   • hormonów białkowych (LH, PRL) i receptorów LH/hCG z użyciem preparatów znakowanych jodem (J-125),
   • hormonów steroidowych (P₄, A₄, T, E₁, E₂, kortyzol), prostaglandyn oraz metabolitu PGF2α – PGFM z użyciem hormonów znakowanych trytem (H3) oraz wykonywanie jodowań hormonów białkowych (LH, PRL) i cytokin (IL-1β, IL-6, TNF-α),

   3.3  Immunoenzymatyczne oznaczanie stężeń (ELISA):

   • hormonów białkowych (LH),
   • hormonów steroidowych (P4, T4, E2, kortyzol),
   • prostaglandyn (PGE2, PGF2α) oraz metabolitu PGF2α – PGFM,
   • oksytocyny i endoteliny przy zastosowaniu hormonów znakowanych peroksydazą chrzanową (HRP) lub biotyną,

   3.4  Immunocytochemiczna lokalizacja:

   • enzymów szlaku przemian kwasu arachidonowego w jajniku, macicy oraz komórkach nabłonkowych zatok mlekonośnych (PTGS-2, PGES, PGFS, AKR1B5, 5-LO),
   • cytokin w jajniku i macicy (TNF-α, IL-1α, IL-1β i innych),
   • enzymów szlaku przemian cholesterolu w jajniku (P450scc, 3β-HSD, aromatazy) oraz komórkach nabłonkowych zatok mlekonośnych (11β-HSD, 3β-HSD),
   • receptorów (TNFR I, TNFR II, IL-1αR, IL-1 βR, LTRI, LTRII, GC-R, LPAR-1, LPAR-2, LPAR-3, LPAR-4, LPAR4, OTR, TrkA, p75),
   • neuroprzekaźników i ich markerów (NPY, VIP, SOM, SP, GAL, CGRP, PACAP, DβH, VACHT, nNOS),
   • fluorescence in situ hybridization (FISH) – wykrywanie genomu wirusa w komórce,
   • znakowanie immunofluorescencyjne (IFA) białek wirusowych w komórce, również w połączeniu z rozprowadzaniem metafaz,
   • fluorescence activated cell sorting (FACS) analysis – analiza cyklu komórkowego.

   3.5  Analiza parametrów krytycznych i gazometrii krwi:

   Analiza parametrów gazometrii, elektrolitów i oksymetrii przy zastosowaniu analizatora parametrów krytycznych RAPIDpoint 405 (SIEMENS).

   3.6  Morfometryczna analiza krwi:

   Podstawowe i rozszerzone badania morfologiczne krwi bydła, kozy, owcy, konia, świni, kota, psa, królika, świnki morskiej, szczura oraz myszy, przy zastosowaniu analizatora hematologicznego ADVIA 2120i (SIEMENS).

   3.7  Immunochemiczna–chemiluminescencyjna analiza krwi:

   Oznaczanie hormonów steroidowych (P4, T, E2, kortyzol) oraz markerów stanu zapalnego (Il-1β, TNF-α, IL-10, LBP), przy zastosowaniu analizatora immunochemicznego IMMULITE®1000 (SIEMENS).

   3.8  Metody proteomiczne: 2D, 2D-DIGE i MALDI-TOF/TOF w celu określenia:

   • enzymów szlaku przemian kwasu arachidonowego w jajniku, macicy oraz komórkach nabłonkowych zatok mlekonośnych (PTGS-2, PGES, PGFS, AKR1B5, 5-LO),
   • białek, które mogą być odpowiedzialne za wczesną zamieralność zarodków u świń,
   • enzymów szlaku przemian cholesterolu w jajniku (P450scc, 3β-HSD, aromatazy) oraz komórkach nabłonkowych zatok mlekonośnych (11β-HSD, 3β-HSD),
   • białek związanych z formowaniem, funkcjonowaniem oraz regresją ciałka żółtego.

   3.9  Koimmunoprecypitacja

   • Określenie związków wiążących 17-β-estradiol.

Wykaz aparatury

1. Dwa stanowiska robocze do izolacji i hodowli komórek:
   • Komora z przepływem laminarnym Thermo Scientific MSC-ADVANTAGE (180)
   • Komory z przepływem laminarnym Thermo Scientific MSC-ADVANTAGE (120) – 2 szt.
   • Komora Esico Class II BSC
   • Inkubator CO₂ ThermoForma
   • Inkubator CO₂ Sanyo
   • Inkubator Memmert IMCO2-153
   • Wirówka MPW 350R 2 szt.
   • Wirówka MPW 223E
   • Pompa perystaltyczna VederFlex Scientific
   • Mikroskop odwrócony standardowy Olympus CKX41 – 2 szt.
   • Mikroskop Olympus CX31RBSF-2
   • Inkubatory z wytrząsaniem EB TH15(Edmund Bühler) – 2 szt.
   • Łaźnia wodna z wytrząsaniem Julabo SW23
   • Łaźnia wodna Major Science SWB-10L-1
   • Myjka ultradźwiękowa do pipet Sonorex
   • Autoklaw Sanyo – 2 szt.
   • Wirówka Eppendorf 5804R
   • Cieplarka Sanyo MOV-112F
   • Suszarka-sterylizator Binder E28
   • Suszarka-sterylizator Terma
   • Zmywarka Smeg GW1060C
2. Stanowisko robocze do izolacji kwasów nukleinowych:
   • Komora z przepływem laminarnym Holten (90)
   • Wirówka laboratoryjna Hettich Universal 32R
   • Wirówka laboratoryjna Eppendorf miniSpin
   • Aparat do elektroforezy agarozowej BIO-RAD PowerPac
   • UV Transilluminator WEALTEC
   • Termocykler BIO-RAD MJ Mini
   • Homogenizator ultradźwiękowy UP50H
   • Homogenizator TissueRuptor Qiagen
   • Wirówka lab Waeltec E-Centrifuge
   • Łaźnia wodna z wytrząsaniem Major Science MW-WB
   • Vortex BioRad Sproud
   • Vortex Mixer LabNet
3. Stanowisko robocze do Western blot:
   • Aparat do elektroforezy poliakryloamidowej BIO-RAD PowerPac
   • Aparat do mokrego transferu BIO-RAD PowerPac
   • Aparat do półsuchego transferu TE70PWR Amersham Biosciences
   • System detekcji białek SNAP i.d. Millipore
   • RollMixer Chemland
4. Zintegrowana Pracownia Immunodiagnostyki

   Zespół wspólnie z Zespółem Immunologii i Mikrobiologii Żywności zorganizował Zintegrowaną Pracownię Immunodiagnostyki. Ze strony ZIPR w skład Zintegrowanej Pracowni Immunodiagnostyki wchodzi:

   4.1. Stanowisko robocze do immunoenzymatycznej analizy stężeń hormonów (ELISA);

   4.2. Stanowisko robocze do immunoizotopowej analizy stężeń hormonów (RIA);

   4.3. Stanowisko robocze do morfometrycznej analizy krwi;

   4.4. Stanowisko robocze do immunochemicznej analizy krwi;

   4.5. Stanowisko robocze do analizy parametrów krytycznych i gazometrii krwi;

5. Pracownia Mikrobiologii i Wirusologii Molekularnej

   5.1 Stanowisko robocze do pracy z kulturami in vitro oraz GMM klasy II;

   5.2 Stanowisko robocze do izolacji fibroblastów z tkanek ludzkich;

   5.3 Stanowisko robocze do analizy ekspresji białek (SDS PAGE + Western blot);

   5.4 Stanowisko robocze do hodowli bakterii na podłożach płynnych i stałych oraz kokultur bakterii z tkankami.

Czytaj więcej

Wykaz aparatury:

1. Aparat do pomiarów elektrochemicznych  AUTOLAB, Eco Chemie, The Netherlands;
2. Potencjometr: Labs, Inc. EMF16 Precision Electrochemistry EMF Interface, Lawson, USA;
3. Piezoelektryczna kwarcowa mikrowaga (QCM) 410 CH Instruments, USA;
4. Aparat do pomiaru kąta zwilżalności OCA 15 – for DataPhysic, Germany;
5. Aparat do pomiaru powierzchniowego rezonansu  plazmonów (SPR) AUTOLAB, Eco Chemie, The Netherlands;
6. Spektrofotometr NANODROP 2000, Thermo Scientific, US.

Techniki pomiarowe:

• woltamperometria cykliczna,
• woltamperometria fali prostokątnej,
• woltamperometria pulsowa różnicowa,
• elektrochemiczna spektroskopia impedancyjna,
• mikrowaga kwarcowa,
• pomiar kąta zwilżania,
• powierzchniowy rezonans plazmonowy.

Czytaj więcej

2025

1. Akbari Nargesi, Erfan; Falahatkar, Bahram; Żarski, Daniel . Semen quality, seminal plasma characteristics, and their relationships in the Anzali lagoon migratory population of Caspian roach (Rutilus caspicus) in the breeding season. Journal of Utilization and Cultivation of Aquatics 2025, 14(1): 253-269 (10.22069/japu.2024.22337.1862).

2. Aleksandrowicz, Róża ; Strączkowski, Marek . RXRs expression in skeletal muscle in relationship with insulin sensitivity in normal-weight and obese volunteers. Journal of Diabetes and Metabolic Disorders 2025, 24(1): art. no 51 (1-6) (10.1007/s40200-024-01546-9).

3. Amaral, Ana; Sadowska, Agnieszka ; Cerveira-Pinto, Marta; Kordowitzki, Paweł; Skarżyński, Dariusz J. ; Ferreira-Dias Graça; Szóstek-Mioduchowska, Anna Z. Ovarian steroids modulate mRNA expression of ECM associated genes and collagen deposition induced by TGF β1 in equine endometrium in vitro. Scientific Reports 2025, 15: art. no 538 (1-12) (10.1038/s41598-024-84250-1).

4. Asnaashari, Solmaz; Jahanban-Esfahlan, Ali; Amarowicz, Ryszard . Harnessing essential oils for acetylcholinesterase inhibition: a literature review. Phytotherapy Research 2025, 39(6): 2915-2988 (10.1002/ptr.8512).

5. Babu, Reshma S. ; Jurgoński, Adam . Nutritional and Metabolic Consequences of Camelina Seed Oil Compared to Flaxseed Oil in a Rat Diet. Molecules 2025, 30(13): art. no 2738 (1-13) (10.3390/molecules30132738).

6. Balkrishna, Acharya; Rai, Priyanka; Verma, Rashmi; Rohela, Akansha; Kumar, Ashwani; Arya, Vedpriya; Khan, Nazam; Amarowicz, Ryszard ; Kumar, Dinesh; Verma, Rachna. Mechanistic insight into anti-inflammatory potential, phytochemistry and ethnomedicinal status of Ilex species: a review. Phytochemistry Reviews 2025, 24: 845-877 (10.1007/s11101-024-09968-2).

7. Bogusławska, Joanna; Rakhmetullina, Aizhan; Grzanka, Małgorzata; Białas, Alex; Rybicka, Beata; Życka-Krzesińska, Joanna; Molcan, Tomasz ; Zielenkiewicz, Piotr; Pączek, Leszek; Piekiełko-Witkowska, Agnieszka. miR395e from Manihot esculenta Decreases Expression of PD-L1 in Renal Cancer: A Preliminary Study. Genes 2025, 16(3): art. no 293 (1-11) (10.3390/genes16030293 ).

8. Cava-Cami, Berta; Galvão, António M. ; Van Ranst, Heidi; Stocker, William A.; Harrison, Craig A.; Smitz, Johan; De Vos, Michel; Kelsey, Gavin; Anckaert, Ellen. Pro-cumulin addition in a biphasic in vitro oocyte maturation system modulates human oocyte and cumulus cell transcriptomes. Molecular Human Reproduction 2025, 31(1): art. no gaaf001 (1-15) (10.1093/molehr/gaaf001).

9. Cejko, Beata I. ; Sławomir, Krejszeff; Cejko, Agata A.; Dryl, Katarzyna . Evaluating sperm characteristics from stripping and testicular extraction in northern pike (Esox lucius) with a focus on stability during storage. Animal Reproduction Science 2025, 247: art. no 107789 (1-12) (10.1016/j.anireprosci.2025.107789).

10. Cydzik, Michał; Demska-Zakęś, Krystyna; Szczepkowski, Mirosław; Szczepkowska, Bożena; Sarosiek, Beata ; Blitek, Michał; Kowalski, Aleksy; Kowalski, Radosław K. The influence of sperm activation methods and oocyte collection on the reproductive effects of northern pike (Esox lucius). Animals 2025, 15(1): art. no 8 (1-15) (10.3390/ani15010008).

11. Debernardis, Rossella ; Palińska-Żarska, Katarzyna; Judycka, Sylwia ; Panda, Abhipsa ; Jarmołowicz, Sylwia; Jastrzębski, Jan P.;Rocha de Almeida, Taina; Błażejewski, Maciej; Hliwa, Piotr; Krejszeff, Sławomir; Żarski, Daniel . Does transcriptome of freshly hatched fish larvae describe past or predict future developmental trajectory?. Aquaculture 2025, 595(Part 1): art. no 741486 (1-15) (10.1016/j.aquaculture.2024.741486).

12. Dietrich, Mariola A. ; Kodzik, Natalia ; Bakun, Magdalena; Szczepkowski, Mirosław; Ciereszko, Andrzej . Phosphoproteomic profiling of Siberian sturgeon (Acipenser baerii Brandt, 1869) sperm: Insights into cryopreservation-induced changes with DMSO and methanol. Biology of Reproduction 2025, przyjęta do druku (10.1093/biolre/ioaf128).

13. Drzewiecka, Ewa M. ; Liszewska, Ewa ; Kozłowski, Krzysztof; Ciereszko, Andrzej ; Słowińska, Mariola . Research note: Reference genes selection for gene expression analyses in reproductive turkey (Meleagris gallopavo) with yellow semen syndrome. Poultry Science 2025, 104(6): art. no 105093 (1-5) (10.1016/j.psj.2025.105093).

14. Drzewiecka, Ewa M. ; Molcan, Tomasz ; Sadowska, Agnieszka ; Piotrowska-Tomala, Katarzyna K. ; Słyszewska, Magda ; Ferreira-Dias, Graça M.; Skarżyński, Dariusz J. ; Szóstek-Mioduchowska, Anna Z. The myometrial transcriptome changes in mares with endometrosis. Scientific Reports 2025, 15: art. no 3173 (1-17) (10.1038/s41598-025-86742-0).

15. Drzewiecka, Ewa M. ; Szóstek-Mioduchowska, Anna Z. ; Wiśniewska, Joanna ; Liszewska, Ewa ; Słowińska, Mariola . Research note: Turkey (Meleagris gallopavo) semen CD14+ macrophages – management, key features, and classification – a pilot study with optimized protocols. Poultry Science 2025, 104(9): art. no 105397 (1-6) (10.1016/j.psj.2025.105397).

16. Franczak, Anita; Żmijewska, Agata; Drzewiecka, Ewa M. ; Kozłowska, Wiktoria; Wydorski, PaweŁ; Paukszto, Łukasz; Brevini, Tiziana L. Effect of electromagnetic field radiation on transcriptomic profile and DNA methylation level in pig conceptuses during the peri-implantation period. Scientific Reports 2025, 15: art. no 14025 (1-21) (10.1038/s41598-025-98918-9).

17. Gospodarska, Emilia ; Ghosh Dastidar, Ranjini ; Jarosławska-Miszkiewicz, Julia ; Rybiński, Maciej ; Raczyk, Marianna ; Tokarczyk-Malesa, Kornelia; Romaszko, Jerzy; Carlberg, Carsten . Transcriptomic profiling of immune modulation induced by vitamin D3 in the VitDPAS and VitDHiD cohort studies . Scientific Reports 2025, 15: art. no 17334 (1-13) (10.1038/s41598-025-02495-w).

18. Grzęda, Emilia; Gutkowska-Kawka, Dominika ; Matuszewska, Julia; Kilańczyk, Ewa; Kaczmarek, Monika ; Dylewski, Łukasz; Sliwowska, Joanna H. Maternal cafeteria diet adversely affects the reproductive parameters of rat offspring in a sex-specific manner. Reproductive Biology and Endocrinology 2025, 23(1): art. no 79 (1-15) (10.1186/s12958-025-01412-0).

19. Jackowska, Agnieszka; Grabowska, Iwona ; Kurzątkowska-Adaszyńska, Katarzyna . Electrochemical RNA-based aptasensor for neomycin detection in milk samples. Food Control 2025, 175: art. no 111257 (1-11) (10.1016/j.foodcont.2025.111257).

20. Jana, Barbara ; Andronowska, Aneta ; Całka, Jarosław; Mówińska, Aleksandra . Biosynthetic pathway for leukotrienes is stimulated by lipopolysaccharide and cytokines in pig endometrial stromal cells. Scientific Reports 2025, 15: art. no 2806 (1-11) (10.1038/s41598-025-86787-1).

21. Janiak, Michał A. ; Gryn-Rynko, Anna; Sulewska, Katarzyna ; Amarowicz, Ryszard ; Penkacik, Kamila ; Graczyk, Radomir; Olszewska-Słonina, Dorota; Majewski, Michał S. Phenolic profiles and antioxidant activity of Morus alba L. infusions prepared from commercially available products and naturally collected leaves. Scientific Reports 2025, 15: art. no 13030 (1-12) (10.1038/s41598-025-97223-9).

22. Jaworska, Joanna ; Tobolski, Dawid; Salem, Shebl E.; Kahler, Anne; Wocławek-Potocka, Izabela ; de Mestre, Amanda M. Single-cell atlas of the pregnant equine endometrium before and after implantation. Biology of Reproduction 2025, 112(3): 458-473 (10.1093/biolre/ioaf004).

23. Kaur, Jasjit; Kaushik, Deepika; Kumar, Mukul; Babagil, Gülçin Emel; Amarowicz, Ryszard ; Proestos, Charalampos; Oz, Emel; Oz, Fatih; Esatbeyoglu, Tuba; Bordiga, Matteo. Comprehensive analysis and characterization of Mangifera indica L. leaf powder. Food Science and Nutrition 2025, 13(6): art. no e70083 (1-13) (10.1002/fsn3.70083).

24. Krauze, Magdalena; Juśkiewicz, Jerzy ; Fotschki, Bartosz ; Pinkosz, Michalina; Ognik, Katarzyna. Hippocampus and jejunum biochemical parameters related to physiological ageing of neurons in rats fed diets with copper nanoparticles and different fiber types. Annals of Animal Science 2025, przyjęta do druku (10.2478/aoas-2024-0019).

25. Krupa-Kozak, Urszula ; Płatosz, Natalia ; Bączek, Natalia ; Šimková, Kristýna; Starowicz, Małgorzata . Increased content of bioactive compounds and health benefits of gluten-free sponge cakes resulting from enrichment with freeze-dried berry powders. Food Chemistry 2025, 472: art. no 142861 (1-12) (10.1016/j.foodchem.2025.142861).

26. Künili, İbrahim Ender; Akdeniz, Vildan; Akpınar, Aslı; Öztürkoğlu Budak, Şebnem; Curiel, José Antonio; Guzel, Mustafa; Karagözlü, Cem; Kasikci, Muzeyyen Berkel; Caruana, Grech Perry Mario; Starowicz, Małgorzata ; Humblot, Christèle; Keyvan, Erhan; Chassard, Christophe; Pracer, Smilja; Vergères, Guy; Kesenkaş, Harun. Bioactive compounds in fermented foods: a systematic narrative review. Frontiers in Nutrition 2025, 12: art. no 1625816 (1-22) (10.3389/fnut.2025.1625816).

27. Łagowska, Karolina; Jurgoński, Adam ; Mori, Mari; Yamori, Yukio; Murakami, Shigeru; Ito, Takashi; Toda, Toshiya; Pieczyńska-Zając, Joanna Maria; Bajerska, Joanna. Effects of dietary seaweed on obesity-related metabolic status: a systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials. Nutrition Reviews 2025, 83(2): 113-130 (10.1093/nutrit/nuae042).

28. Mahadeva, Manohara; Niestępski, Sebastian ; Kowacz, Magdalena . Modifying membrane potential synchronously controls the somite’s formation periodicity and growth. Developmental Biology 2025, 517: 317-326 (10.1016/j.ydbio.2024.11.002).

29. Mahé, Coline; Mówińska, Aleksandra ; Albrecht, Elke; Reynaud, Karine; Lavigne, Régis; Com, Emmanuelle; Pineau, Charles; Mermillod, Pascal; Saint-Dizier, Marie; Schoen, Jennifer. Laser capture proteomics reveals new candidates for sperm-interacting proteins in the bovine oviduct epithelium. Reproduction 2025, 170(2): art. no e240390 (1-15) (10.1530/REP-24-0390).

30. Maissan, Parcival ; Carlberg, Carsten . Circadian regulation of vitamin D target genes reveals a network shaped by individual responsiveness. Nutrients  2025, 17(7): art. no 1204 (1-15) (10.3390/nu17071204).

31. Malecka-Baturo, Kamila ; Grabowska, Iwona . Efficiency of electrochemical immuno- vs. apta(geno)sensors for multiple cancer biomarkers detection. Talanta 2025, 281: art. no 126870 (1-19) (10.1016/j.talanta.2024.126870).

32. Marasek-Ciołakowska, Agnieszka; Machlańska, Aleksandra; Wiczkowski, Wiesław ; Szawara-Nowak, Dorota ; Lahuta, Lesław B.; Góraj-Koniarska, Justyna; Miyamoto, Kensuke; Ueda, Junichi; Saniewski, Marian; Horbowicz, Marcin. Effects of 1-N-Naphthylphthalamic acid on root and leaf development of Muscari armeniacum and the related metabolic and physiological features. International Journal of Molecular Sciences 2025, 26(13): art. no 6431 (1-18) (10.3390/ijms26136431).

33. Marzec, Aleksandra; Cholewińska, Ewelina; Fotschki, Bartosz ; Juśkiewicz, Jerzy ; Stępniowska, Anna; Ognik, Katarzyna. Are the biodistribution and metabolic effects of copper nanoparticles dependent on differences in the physiological functions of dietary fibre?. Annals of Animal Science 2025, 25(1): 175-187 (10.2478/aoas-2024-0057).

34. Mostek-Majewska, Agnieszka ; Bossowska-Nowicka, Magdalena; Słowińska, Mariola ; Ciereszko, Andrzej . PRDX5 and PRDX6 translocation and oligomerization in bull sperm: a response to cryopreservation-induced oxidative stress. Cell Communication and Signaling 2025, 23: art. no 15 (1-16) (10.1186/s12964-024-02015-9).

35. Mówińska, Aleksandra ; Rękawiecki, Robert ; Zając, Paulina ; Kowalik, Magdalena K. Phoenixin-14 and its receptor GPR173 in the bovine endometrium: Expression and regulation during the estrous cycle and impact on secretory activity. Theriogenology 2025, 243: art. no 117456 (1-8) (10.1016/j.theriogenology.2025.117456).

36. Myszczyński, Kamil; Szuszkiewicz, Joanna ; Krawczyński, Kamil ; Sikora, Małgorzata ; Romaniewicz, Marta ; Guzewska, Maria M. ; Zabielski, Piotr; Kaczmarek, Monika M. In-depth analysis of miRNA binding sites reveals the complex response of uterine epithelium to miR-26a-5p and miR-125b-5p during early pregnancy. Molecular and Cellular Proteomics 2025, 24(1): art. no 100879 (1-16) (10.1016/j.mcpro.2024.100879).

37. Narwal, Ekta; Choudhary, Jairam; Kumar, Manoj; Amarowicz, Ryszard ; Kumar, Sunil; Radha, -; Chandran, Deepak; Dhumal, Sangram; Singh, Surinder; Senapathy, Marisennayya; Rajalingam, Sureshkumar; Muthukumar, Muthamilselvan; Mekhemar, Mohamed. Botanicals as promising antimicrobial agents for enhancing oral health: a comprehensive review. Critical Reviews in Microbiology 2025, 51(1): 84-107 (10.1080/1040841X.2024.2321489).

38. Ogrodowczyk, Anna M. ; Markiewicz, Lidia H. ; Szmatowicz, Beata ; Koźniewski, Bartłomiej; Wróblewska, Barbara . Improved quality, sensory properties and nutraceutical potential of the fermented beverages fortified with freeze-dried berries and acacia honey. Food Chemistry 2025, 486: art. no 144469 (1-16) (10.1016/j.foodchem.2025.144469).

39. Pardyak, Laura; Liszewska, Ewa ; Judycka, Sylwia ; Machcińska-Zielińska, Sylwia ; Karol, Halina ; Dietrich, Mariola A. ; Gojło, Ewa; Arent, Zbigniew; Bilińska, Barbara; Rusco, Giusy; Iaffaldano, Nicolaia; Ciereszko, Andrzej ; Słowińska, Mariola . The effect of cryopreservation on the turkey (Meleagris gallopavo) semen proteome. Theriogenology 2025, 245: art. no 117473 (1-15) (10.1016/j.theriogenology.2025.117473).

40. Piechowicz, Bartosz; Łaś, Sara; Łaś, Małgorzata; Łuc, Klaudia; Zaręba, Lech; Kobylarz, Damian; Kuliga, Aleksandra ; Grodzicki, Przemysław; Zienkiewicz, Andrzej; Romerowicz-Misielak, Maria. The effects of deltamethrin (a synthetic pyrethroid insecticide), an anionic surfactant alone, and a co-formulated mixture of these substances on the honeybee (Apis mellifera) temperature preference, CO2 emission, and expression of detoxification-related genes. Journal of Plant Protection Research 2025, 65(2): 187-199 (10.24425/jppr.2025.153285).

41. Premathilaka, Chanaka; Feix, Anna Sophia; Papanikolaou, Konstantinos; Kjærup, Rikke; Andronowska, Aneta ; Kodithuwakku, Suranga; Fazeli, Alireza; Dalgaard, Tina S. Immunomodulatory effects of Ascardia galli excretory-secretory products, including extracellular vesicles on host immune cell function. Avian Pathology 2025, 4: 1-38 (10.1080/03079457.2025.2528838).

42. Premathilaka, Chanaka; Kodithuwakku, Suranga; Midekessa, Getnet; Godakumara, Kasun; Ul Ain Reshi, Qurat; Andronowska, Aneta ; Orro, Toomas; Fazeli, Alireza. Bovine fecal extracellular vesicles: A novel noninvasive tool for understanding gut physiology and pathophysiology in calves. Journal of Dairy Science 2025, 108(4): 4116-4130 (10.3168/jds.2024-25920).

43. Rahman, Nafis A.; Chrusciel, Marcin; Ponikwicka-Tyszko, Donata ; Pulawska-Moon, Kamila; Doroszko, Milena; Stelmaszewska, Joanna; Keuzer, Oliver J.; Rivero-Muller, Adolfo; Bernaczyk, Piotr; Zalewski, Grzegorz; Guo, Peilan; Toppari, Jorma; Li, Xiangdong; Ziecik, Adam J.; Wołczyński, Sławomir ; Huhtaniemi, Ilpo. Targeted destruction of follicle stimulating hormone receptor-positive cancer cells in vitro and in vivo by a lytic peptide Phor21-FSHβ conjugate. Molecular Medicine 2025, 31(1): art. no 224 (1-17) (10.1186/s10020-025-01292-5).

44. Rahman, Nafis A.; Chrusciel, Marcin; Ponikwicka-Tyszko, Donata ; Puławska-Moon, Kamila; Stelmaszewska, Joanna; Doroszko, Milena; Kreuzer, Oliver J.; Rivero-Muller, Adolfo; Li, Xiangdong; Zięcik, Adam J. ; Wołczyński, Sławomir ; Huhtaniemi, Ilpo T. Hecate-FSHβ33-53C/S lytic peptide conjugate selectively kills targeted follicle stimulating hormone receptor (FSHR)-positive cancer cells. Biomedicine & Pharmacotherapy 2025, 186: art. no 118022 (1-10) (10.1016/j.biopha.2025.118022).

45. Różaniecka-Zwolińska, Karolina; Cholewińska, Ewelina; Fotschki, Bartosz ; Juśkiewicz, Jerzy ; Ognik, Katarzyna. Manganese deficiency or dietary manganese(III) oxide nanoparticle supplementation: consequences for hematology, and intestinal and brain immunity in rats. Frontiers in Immunology 2025, 16: art. no 1528770 (1-10) (10.3389/fimmu.2025.1528770).

46. Sana; Ahmad, Waqar; Anwar, Farooq; Ismail, Hammad; Farid, Mujahid; Ayub, Muhammad Adnan; Sumrra, Sajjad Hussain; Emenike, Chijioke; Starowicz, Małgorzata ; Zubair, Muhammad. Multifactorial evaluation of honey from pakistan: essential minerals, antioxidant potential, and toxic metal contamination with relevance to human health risk. Foods 2025, 14(14): art. no 2493 (1-23) (10.3390/foods14142493).

47. Schiele, Phillip; Sada Japp, Alberto; Stark, Regina; Sattelberg, Joanna J.; Nikolaou, Christos; Kornhuber, Gereon; Abbasi, Parya; Ding, Nina; Rosnev, Stanislav; Meinke, Stefan; Mühle, Kerstin; Loyal, Lucie; Braun, Julian; Dingeldey, Manuela; Durlanik, Sibel; Matzmohr, Nadine; Ponikwicka-Tyszko, Donata ; Wołczyński, Sławomir ; Rahman,Nafis A.; Taniuchi, Ichiro; Schlickeiser, Stephan; Giesecke-Thiel, Claudia; Blankenstein, Thomas; Na, Il-Kang; Thiel, Andreas; Frentsch, Marco. CD8+ T cell-derived CD40L mediates non-canonical cytotoxicity in CD40-expressing cancer cells. Science Advances 2025, 11(21): art. no eadr9331 (-14) (10.1126/sciadv.adr9331).

48. Sienkiewicz-Szłapka, Edyta; Janysz, Arleta; Wróbel, Michał H. Quantification of lawsone and p-phenylenediamine in natural henna products for hair colouring available in poland. Contact Dermatitis 2025, 92(4): 261-272 (10.1111/cod.14739).

49. Sołek, Przemysław; Różaniecka-Zwolińska, Karolina; Stępniowska, Anna; Ognik, Katarzyna; Juśkiewicz, Jerzy ; Fotschki, Bartosz . Consequences of detary Manganese-based nanoparticles supplementation or deficiency on systemic health and gut metabolic dynamics in rats. Nanotechnology, Science and Applications 2025, 18: 19-34 (10.2147/NSA.S494533).

50. Stryiński, Robert; Fiedorowicz, Ewa; Mateos, Jesús; Andronowska, Aneta ; Łopieńska-Biernat, Elżbieta; Carrera, Mónica. Exploring the exoproteome of the parasitic nematode Anisakis simplex (s. s.) and its impact on the human host – an in vitro cross-talk proteomic approach. Frontiers in Immunology 2025, 16: art. no 1509984 (1-18) (10.3389/fimmu.2025.1509984).

51. Ścieszka, Sylwia; Piekarska-Radzik, Lidia; Klewicki, Robert; Sójka, Michał; Juśkiewicz, Jerzy ; Fotschki, Bartosz ; Klewicka, Elżbieta; Grzelak-Błaszczyk, Katarzyna. Spontaneously fermented Allium cepa L. as a source of lactic acid bacteria with probiotic potential. Scientific Reports 2025, 15: art. no 25970 (1-17) (10.1038/s41598-025-10037-7).

52. Walewska, Edyta ; Hamada, Zahra; Pérez-García, Vicente; Galvão, António M. Altered uterine leptin signalling in obese mothers: from impaired decidualisation to pregnancy complications. Reproduction 2025, 169: art. no e240319 (1-15) (10.1530/REP-24-0319).

53. Wójtowicz, Anna ; Sadowska, Agnieszka ; Piotrowska-Tomala, Katarzyna K. ; Szóstek-Mioduchowska, Anna Z. The effect of amphiregulin on equine endometrial fibroblasts: in vitro responses of fibroblast derived from non-fibrotic and fibrotic endometrium. Reproductive Biology 2025, 25(2): art. no 101018 (1-5) (10.1016/j.repbio.2025.101018).

54. Zarzycka, Marta; Korzekwa, Anna J. ; Dulińska-Litewka, Joanna; Kaingu, Catherine Kaluwa; Kotula-Balak, Małgorzata. Red deer (Cervus elaphus L.) antler stem cell culture medium inhibits prostate cancer cells. Histochemistry and Cell Biology 2025, 163(41): 1-13 (10.1007/s00418-025-02373-6).

55. Zielińska, Danuta; Gulewicz, Piotr; Kasprowicz-Potocka, Małgorzata; Zieliński, Henryk . Determination of the antioxidant capacity of germinated and yeast-fermented sweet and bitter lupin seeds and sprouts via cyclic voltammetry compared to the spectrophotometric and photochemiluminescence methods. Applied Sciences-Basel 2025, 15(2): art. no 729 (1-11) (10.3390/app15020729).

56. Zielińska, Danuta; Starowicz, Małgorzata ; Wronkowska, Małgorzata ; Zieliński, Henryk . Multifaceted Biological Activity of Rutin, Quercetin, and Quercetin’s Glucosides. Molecules 2025, 30(12): art. no 2555 (1-14) (10.3390/molecules30122555).

57. Zielińska, Danuta; Starowicz, Małgorzata ; Wronkowska, Małgorzata ; Zieliński, Henryk . Angiotensin-converting enzyme inhibitory activity of selected phenolic acids, flavonoids, their O-glucosides, and low-molecular-weight phenolic metabolites in relation to their oxidation potentials. Metabolites 2025, 15(7): art. no 443 (1-15) (10.3390/metabo15070443).

Czytaj więcej

Czytaj więcej

1. Katholieke Universiteit Leuven, KU Leuven, Department of Chemistry, Leuven, Belgia
2. University of Lille, the Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Francja
3. The State University of New York at Potsdam, USA
4. Cornell University, USA
5. Interdisciplinary Nanoscience Centre (iNANO), Aarhus University, Dania
6. University of Rome La Sapienza, Włochy
7. Institute of Biophysics of the Czech Academy of Sciences, Czechy

Czytaj więcej