PL

Fundusz Pomocy Materialnej

Regulamin przyznawania świadczeń pomocy materialnej dla doktorantów
Zarządzenie nr 191/2015 – w sprawie ustalenia wysokości dochodu na członka rodziny doktoranta uprawniająca do ubiegania się o stypendium socjalne oraz wysokości poszczególnych form pomocy materialnej dla doktorantów IRZiBŻ PAN w Olsztynie w roku akademickim 2015/2016
Załącznik nr 1 – Wniosek o przyznanie stypendium socjalnego, stypendium socjalnego w podwyższonej wysokości, stypendium dla osób niepełnosprawnych
Załącznik nr 5 – Formularz wniosku o przyznanie stypendium dla najlepszych doktorantów
Załącznik nr 6 – Wniosek o przyznanie zapomogi
Załącznik nr 7 – Zasady powołania Komisji Stypendialnej i Odwoławczej Komisji Stypendialnej
Zaświadczenie z Urzędu Skarbowego o dochodzie członka rodziny podlegającym opodatkowaniu podatkiem dochodowym od osób fizycznych
Wniosek o uwzględnienie dochodu utraconego/uzyskanego w dochodzie rodziny
Oświadczenie o liczbie przepracowanych miesięcy
Oświadczenie o dochodzie uzyskiwanym z pozarolniczej działalności osób rozliczających się na podstawie przepisów o zryczałtowanym podatku dochodowym

 

Czytaj więcej

Publikacje ZPCM

2026

  1. Danowska, Magdalena orcid; Nikołajuk, Agnieszka orcid; Strączkowski, Marek orcid. Skeletal muscle expression of the genes associated with glycoprotein 130 signaling in relation to obesity and insulin sensitivity. Journal of Endocrinological Investigation 2026, 49: 911-919 (10.1007/s40618-025-02781-4).

2025

  1. Aleksandrowicz, Róża orcid; Strączkowski, Marek orcid. RXRs expression in skeletal muscle in relationship with insulin sensitivity in normal-weight and obese volunteers. Journal of Diabetes and Metabolic Disorders 2025, 24(1): art. no 51 (1-6) (10.1007/s40200-024-01546-9).

2024

  1. Danowska, Magdalena orcid; Stefanowicz, Magdalena; Strączkowski, Marek orcid. The expression of NFAT family genes in subcutaneous adipose tissue before and after weight loss in obese individuals. Nutrition, Metabolism and Cardiovascular Diseases 2024, 34(11): 2455-2463 (10.1016/j.numecd.2024.06.011).

  2. Karczewska-Kupczewska, Monika; Stefanowicz, Magdalena; Nikołajuk, Agnieszka orcid; Strączkowski, Marek orcid. Weight-reducing dietary intervention increases the ability of hyperinsulinemia to suppress serum ghrelin concentration in individuals with obesity. Journal of Nutrition 2024, 154(5): 1631-1639 (10.1016/j.tjnut.2023.12.043).

  3. Karczewska-Kupczewska, Monika; Stefanowicz, Magdalena; Nikołajuk, Agnieszka orcid; Strączkowski, Marek orcid. Association of skeletal muscle karyopherin α1 and α2 with myogenesis and insulin action. Polish Archives of Internal Medicine – Polskie Archiwum Medycyny Wewnętrznej 2024, 134(7-8): art. no 16797 (1-5) (10.20452/pamw.16797).

  4. Klejbuk, Kamil orcid; Strączkowski, Marek orcid. Interleukin-38 and Insulin Resistance. Endocrine, Metabolic and Immune Disorders – Drug Targets 2024, 24(6): 611-616 (10.2174/1871530323666230911114150).

  5. Klejbuk, Kamil orcid; Strączkowski, Marek orcid. Impact of weight loss on the expression of negative regulators of nuclear factor κB (NLRP12, NLRC3, and NLRX1) in subcutaneous adipose tissue. Polish Archives of Internal Medicine – Polskie Archiwum Medycyny Wewnętrznej 2024, 134(4): art. no 16721 (1-4) (10.20452/pamw.16721).

  6. Strączkowski, Marek orcid; Stefanowicz, Magdalena, Nikołajuk, Agnieszka; Karczewska-Kupczewska, Monika. The effect of diet-induced weight-loss on subcutaneous adipose tissue expression of genes associated with thyroid hormone action. Clinical Nutrition 2024, 43(12): 245-250 (10.1016/j.clnu.2024.11.006).

2023

  1. Aleksandrowicz, Róża orcid; Stefanowicz, Magdalena; Strączkowski, Marek orcid. Skeletal muscle integrin expression in non-obese men with varying degrees of insulin sensitivity. Endocrine Journal 2023, 70(9): 909-915 (10.1507/endocrj.EJ23-0151).

  2. Aleksandrowicz, Róża orcid; Strączkowski, Marek orcid. Link between insulin resistance and skeletal muscle extracellular matrix remodeling. Endocrine Connections 2023, 12(5): art. no e230023 (1-12) (10.1530/EC-23-0023).

  3. Danowska, Magdalena orcid; Strączkowski, Marek orcid. The Ca 2+/Calmodulin-dependent Calcineurin/NFAT Signaling Pathway in the Pathogenesis of Insulin Resistance in Skeletal Muscle. Experimental and Clinical Endocrinology and Diabetes 2023, 131(11): 589-594 (10.1055/a-2174-7958).

  4. Nikołajuk, Agnieszka orcid; Stefanowicz, Magdalena; Strączkowski, Marek orcid; Karczewska-Kupczewska, Monika. Changes in adipose tissue gene expression of the core components of the Hippo signaling pathway in young adults with uncomplicated overweight or obesity following weight loss. Journal of Nutrition 2023, 153(3): 665-672 (10.1016/j.tjnut.2023.01.024).

  5. Strączkowski, Marek orcid; Stefanowicz, Magdalena; Nikołajuk, Agnieszka orcid; Karczewska-Kupczewska, Monika. Subcutaneous adipose tissue circadian gene expression: Relationship with insulin sensitivity, obesity, and the effect of weight-reducing dietary intervention. Nutrition 2023, 115: art. no 112153 (1-6) (10.1016/j.nut.2023.112153).

  6. Strączkowski, Marek orcid; Stefanowicz, Magdalena; Nikołajuk, Agnieszka orcid; Karczewska-Kupczewska, Monika. Subcutaneous adipose tissue expression of genes associated with glucocorticoid action: relationship with insulin sensitivity, obesity, and weight loss. Polish Archives of Internal Medicine – Polskie Archiwum Medycyny Wewnętrznej 2023, 133(12): art. no 16621 (1-5) (10.20452/pamw.16621).

2022

  1. Dobrzycka, Marta; Kołakowski, Adrian; Stefanowicz, Magdalena; Matulewicz, Natalia; Nikołajuk, Agnieszka; Karczewska-Kupczewska, Monika. Inverse regulation of serum osteoprotegerin and B-type natriuretic peptide concentrations by free fatty acids elevation in young healthy humans. Nutrients 2022, 14(4): art. no 837 (1-10) (10.3390/nu14040837).
  2. Karczewska-Kupczewska, Monika; Nikołajuk, Agnieszka; Kondraciuk, Marcin; Stachurska, Zofia; Dubatówka, Marlena; Szpakowicz, Anna; Strączkowski, Marek; Kowalska, Irina; Kamiński, Karol. The relationships between FLAIS, a novel insulin sensitivity index, and cardiovascular risk factors in a population-based study. Cardiovascular Diabetology 2022, 21: art. no 55 (1-10) (10.1186/s12933-022-01491-y).
  3. Stefanowicz, Magdalena; Nikołajuk, Agnieszka; Matulewicz, Natalia; Strączkowski, Marek; Karczewska-Kupczewska, Monika. Skeletal muscle RUNX1 is related to insulin sensitivity through its effect on myogenic potential. European Journal of Endocrinology 2022, 187(1): 143-157 (10.1530/EJE-21-0776).
  4. Strączkowski, Marek; Nikołajuk, Agnieszka; Stefanowicz, Magdalena; Matulewicz, Natalia; Fernández-Real, José M.; Karczewska-Kupczewska, Monika. Adipose tissue and skeletal muscle expression of genes associated with thyroid hormone action in obesity and insulin resistance. Thyroid 2022, 32(2): 206-214 (10.1089/thy.2021.0351).
  5. Strączkowski, Marek; Stefanowicz, Magdalena; Matulewicz, Natalia; Nikołajuk, Agnieszka; Karczewska-Kupczewska, Monika. Relation of adipose tissue and skeletal muscle FKBP5 expression with insulin sensitivity and the regulation of FKBP5 by insulin and free fatty acids. Endocrine 2022, 76: 536-542 (10.1007/s12020-022-03018-7).

2021

  1. Karczewska-Kupczewska, Monika; Nikołajuk, Agnieszka; Stefanowicz, Magdalena; Matulewicz, Natalia; Arnoriaga-Rodriguez, Maria; Fernandez-Real, Jose M.; Strączkowski, Marek. Novel laboratory index, based on fasting blood parameters, accurately reflects insulin sensitivity. Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism 2021, 106(12): e5208-e5221 (10.1210/clinem/dgab489).
  2. Rydzewska, Marta; Nikołajuk, Agnieszka; Matulewicz, Natalia; Stefanowicz Magdalena; Karczewska-Kupczewska, Monika. Serum secreted frizzled-related protein 5 in relation to insulin sensitivity and its regulation by insulin and free fatty acids. Endocrine 2021, 74(2): 300-307 (10.1007/s12020-021-02793-z).

2020

  1. Karczewska-Kupczewska, Monika; Nikołajuk, Agnieszka; Majewski, Radosław; Filarski, Remigiusz; Stefanowicz, Magdalena; Matulewicz, Natalia; Strączkowski, Marek. Changes in adipose tissue lipolysis gene expression and insulin sensitivity after weight loss. Endocrine Connections 2020, 9(2): 90-100 (doi: 10.1530/EC-19-0507).
  2. Karczewska-Kupczewska, Monika; Nikołajuk, Agnieszka; Stefanowicz, Magdalena; Matulewicz, Natalia; Kowalska, Irina; Strączkowski, Marek. Serum and adipose tissue chemerin is differentially related to insulin sensitivity. Endocrine Connections 2020, przyjęta do druku (doi: 10.1530/EC-20-0084).

2018

  1. Karczewska-Kupczewska, Monika; Nikołajuk, Agnieszka; Filarski, Remigiusz; Majewski, Radosław; Tarasów, Eugeniusz. Intralipid/heparin infusion alters the brain metabolites assessed with 1H-MRS spectroscopy in young healthy men. Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism 2018, 103(7): 2563-2570 (doi: 10.1210/jc.2018-00107).
  2. Katsyuba, Elena; Mottis, Adrienne; Ziętak, Marika; De Franco, Francesca; van der Velpen, Vera; Gariani, Karim; Ryu, Dongryeol; Cialabrini, Lucia; Matilainen, Olli; Liscio, Paride; Giacchè, Nicola; Stokar-Regenscheit, Nadine; Legouis, David; de Seigneux, Sophie; Ivanisevic, Julijana; Raffaelli, Nadia; Schoonjans, Kristina; Pellicciari, Roberto; Auwerx, Johan. De novo NAD+ synthesis enhances mitochondrial function and improves health. Nature 2018, 563: 354-359 (doi: 10.1038/s41586-018-0645-6).
  3. Nikołajuk, Agnieszka; Matulewicz, Natalia; Stefanowicz, Magdalena; Karczewska-Kupczewska, Monika. Serum matrix metalloproteinase 9 and macrophage migration inhibitory factor (MIF) are increased in young healthy nonobese subjects with positive family history of type 2 diabetes. International Journal of Endocrinology 2018, 2018: art. no 3470412 (1-7) (doi: 10.1155/2018/3470412).
  4. Stefanowicz, Magdalena; Nikołajuk, Agnieszka; Matulewicz, Natalia; Karczewska-Kupczewska, Monika. Adipose tissue, but not skeletal muscle, sirtuin 1 expression is decreased in obesity and related to insulin sensitivity. Endocrine 2018, 60(2): 263-271 (doi: 10.1007/s12020-018-1544-1).
  5. Strączkowski, Marek; Nikołajuk, Agnieszka; Majewski, Radosław; Filarski, Remigiusz; Stefanowicz, Magdalena; Matulewicz, Natalia; Karczewska-Kupczewska, Monika. The effect of moderate weight loss, with or without (1,3)(1,6)-β-glucan addition, on subcutaneous adipose tissue inflammatory gene expression in young subjects with uncomplicated obesity. Endocrine 2018, 61(2): 275-284 (doi: 10.1007/s12020-018-1619-z).
  6. Velazquez-Villegas, Laura A.; Perino, Alessia; Lemos, Vera; Ziętak, Marika; Nomura, Mitsunori; Pols, Thijs W. H.; Schoonjans, Kristina. TGR5 signalling promotes mitochondrial fission and beige remodelling of white adipose tissue. Nature Communications 2018, 9(1): art. no 245 (1-13) (doi: 10.1038/s41467-017-02068-0).

2017

  1. Matulewicz, Natalia; Stefanowicz, Magdalena; Nikołajuk, Agnieszka; Karczewska-Kupczewska, Monika. Markers of adipogenesis, but not inflammation in adipose tissue, are independently related to insulin sensitivity. Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism 2017, 102(8): 3040-3049 (doi: 10.1210/jc.2017-00597).

2016

  1. Adamska, Agnieszka; Karczewska-Kupczewska, Monika; Łebkowska, Agnieszka; Milewski, Robert; Górska, Maria; Otziomek, Elżbieta; Nikołajuk, Agnieszka; Wołczyński, Sławomir; Kowalska, Irina. Serum irisin and its regulation by hyperinsulinemia in women with polycystic ovary syndrome. Endocrine Journal 2016, 63(12): 1107-1112 (doi: 10.1507/endocrj.EJ16-0249).
  2. Karczewska-Kupczewska, Monika; Stefanowicz, Magdalena; Matulewicz, Natalia; Nikołajuk, Agnieszka; Strączkowski, Marek. Wnt signaling genes in adipose tissue and skeletal muscle of humans with different degrees of insulin sensitivity. Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism 2016, 101(8): 3079-3087 (doi: 10.1210/jc.2016-1594).
  3. Łebkowska, Agnieszka; Adamska, Agnieszka; Karczewska-Kupczewska, Monika; Nikołajuk, Agnieszka; Otziomek, Elżbieta; Milewski, Robert; Górska, Maria; Wołczyński, Sławomir; Kowalska, Irina. Serum anti-Müllerian hormone concentration in women with polycystic ovary syndrome and type 1 diabetes mellitus. Metabolism: Clinical and Experimental 2016, 65(5): 804-811 (doi: 10.1016/j.metabol.2016.02.005).
  4. Matulewicz, Natalia; Karczewska-Kupczewska, Monika. Insulinooporność a przewlekła reakcja zapalna [Insulin resistance and chronic inflammation]. Postępy Higieny i Medycyny Doświadczalnej 2016, 70: 1245-1257 (pdf).
  5. Moreno-Navarrete, Jose M.; Blasco, Gerard; Xifra, Gemma; Karczewska-Kupczewska, Monika; Stefanowicz, Magdalena; Matulewicz, Natalia; Puig, Josep; Ortega, Francisco; Ricart, Wilfredo; Strączkowski, Marek; Fernández-Real, Jose M. Obesity is associated with gene expression and imaging markers of iron accumulation in skeletal muscle. Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism 2016, 101(3): 1282-1289 (doi: 10.1210/jc.2015-3303).

2015

  1. Nikołajuk, Agnieszka; Karczewska-Kupczewska, Monika; Strączkowski, Marek. Relationship between serum IL-12 and p40 subunit concentrations and lipid parameters in overweight and obese women. Metabolic Syndrome and Related Disorders 2015, 13(8): 336-342 (doi: 10.1089/met.2014.0164).
  2. Stefanowicz, Magdalena; Strączkowski, Marek; Karczewska-Kupczewska, Monika. Rola SIRT1 w patogenezie insulinooporności mięśni szkieletowych [The role of SIRT1 in the pathogenesis of insulin resistance in skeletal muscle]. Postępy Higieny i Medycyny Doświadczalnej 2015, 69: 63-68 (doi: 10.5604/17322693.1136379).

2014

  1. Adamska, Agnieszka; Karczewska-Kupczewska, Monika; Nikołajuk, Agnieszka; Otziomek, Elżbieta; Górska, Maria; Kowalska, Irina; Strączkowski, Marek. Relationships of serum soluble E-selectin concentration with insulin sensitivity and metabolic flexibility in lean and obese women. Endocrine 2014, 45(3): 422-429 (doi: 10.1007/s12020-013-0025-9).
  2. Ortega, Francisco J.; Mercader, Josep M.; Moreno-Navarrete, Jose M.; Rovira, Oscar; Guerra, Ester; Esteve, Eduardo; Xifra, Gemma; Martínez, Cristina; Ricart, Wifredo; Rieusset, Jennifer; Rome, Sophie; Karczewska-Kupczewska, Monika; Strączkowski, Marek; Fernández-Real, Jose M. Profiling of circulating microRNAs reveals common microRNAs linked to type 2 diabetes that change with insulin sensitization. Diabetes Care 2014, 37(5): 1375-1383 (doi: 10.2337/dc13-1847).
  3. Sala, David; Ivanova, Saška; Plana, Natàlia; Ribas, Vicent; Duran, Jordi; Bach, Daniel; Turkseven, Saadet; Laville, Martine; Vidal, Hubert; Karczewska-Kupczewska, Monika; Kowalska, Irina; Strączkowski, Marek; Testar, Xavier; Palacín, Manuel; Sandri, Marco; Serrano, Antonio L.; Zorzano, Antonio. Autophagy-regulating TP53INP2 mediates muscle wasting and is repressed in diabetes. Journal of Clinical Investigation 2014, 124(5): 1914-1927 (doi: 10.1172/JCI72327).

2013

  1. Adamska, Agnieszka; Karczewska-Kupczewska, Monika; Nikołajuk, Agnieszka; Otziomek, Elżbieta; Górska, Maria; Kowalska, Irina; Strączkowski, Marek. Normal metabolic flexibility despite insulin resistance in women with polycystic ovary syndrome. Endocrine Journal 2013, 60(9): 1107-1113 (doi: 10.1507/endocrj.EJ13-0115).
  2. Karczewska-Kupczewska, Monika; Adamska, Agniewszka; Nikołajuk, Agnieszka; Otziomek, Elżbieta; Górska, Maria; Kowalska, Irina; Strączkowski, Marek. Circulating interleukin 6 and soluble forms of its receptors in relation to resting energy expenditure in women with anorexia nervosa. Clinical Endocrinology 2013, 79(6): 812-816 (doi: 10.1111/cen.12118).
  3. Karczewska-Kupczewska, Monika; Tarasów, Eugeniusz; Nikołajuk, Agnieszka; Stefanowicz, Magdalena; Matulewicz, Natalia; Otziomek, Elżbieta; Górska, Maria; Strączkowski, Marek; Kowalska, Irina. The effect of insulin infusion on the metabolites in cerebral tissues assessed with proton magnetic resonance spectroscopy in young healthy subjects with high and low insulin sensitivity. Diabetes Care 2013, 36(9): 2787-2793 (doi: 10.2337/dc12-1437).
  4. Kowalska, Irina; Karczewska-Kupczewska, Monika; Adamska, Agnieszka; Nikołajuk, Agnieszka; Otziomek, Elżbieta; Strączkowski, Marek. Serum visfatin is differentially regulated by insulin and free Fatty acids in healthy men. Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism 2013, 98(2): E293-E297 (doi: 10.1210/jc.2012-2818).
  5. Strączkowski, Marek; Karczewska-Kupczewska, Monika; Adamska, Agnieszka; Otziomek, Elżbieta; Kowalska, Irina; Nikołajuk, Agnieszka. Serum fibroblast growth factor 21 in human obesity: regulation by insulin infusion and relationship with glucose and lipid oxidation. International Journal of Obesity 2013, 37(10): 1386-1390 (doi: 10.1038/ijo.2013.10).

2012

  1. Karczewska-Kupczewska, Monika; Kowalska, Irina; Nikołajuk, Agnieszka; Adamska, Agnieszka; Zielińska, Magdalena; Kamińska, Natalia; Otziomek, Elżbieta; Górska, Maria; Strączkowski, Marek. Circulating brain-derived neurotrophic factor concentration is downregulated by intralipid/heparin infusion or high-fat meal in young healthy male subjects. Diabetes Care 2012, 35(2): 358-362 (doi: 10.2337/dc11-1295).
  2. Karczewska-Kupczewska, Monika; Lelental, Natalia; Adamska, Agnieszka; Nikołajuk, Agnieszka; Kowalska, Irina; Górska, Maria; Zimmermann, Rudiger; Kornhuber, Johannes; Strączkowski, Marek; Lewczuk, Piotr. The influence of insulin infusion on the metabolism of amyloid β peptides in plasma. Alzheimer’s & Dementia 2012, 9(4): 400-405 (doi: 10.1016/j.jalz.2012.01.013).

Czytaj więcej

Najważniejsze osiągnięcia naukowe ZPCM

  1. Udział w opracowaniu prostej i dokładnej metody pomiaru wrażliwości na insulinę, FLAIS (Fasting Laboratory Assessment of Insulin Sensitivity), która pozwala na identyfikację insulinooporności nawet w populacji bez jawnych zaburzeń metabolicznych.
  2. Wykazanie zmienionej ekspresji genów związanych z działaniem hormonów tarczycy w tkance tłuszczowej i mięśniach szkieletowych osób otyłych, co wskazuje na upośledzone działanie hormonów tarczycy w otyłości.
  3. Wykazanie, że czynnik transkrypcyjny RUNX1 w mięśniach szkieletowych jest związany z wrażliwości na insulinę głównie poprzez swój wpływ na miogenezę. Sugeruje to, że potencjał miogenny/regeneracyjny mięśni szkieletowych może być ważnym czynnikiem determinującym działanie insuliny.
  4. Wykazanie, że redukcja masy ciała pod wpływem diety nie łączy się z redukcją zapalenia w tkance tłuszczowej u osób otyłych, natomiast nadmierna lipoliza może hamować poprawę wrażliwości na insulinę w wyniku redukcji masy ciała.

Czytaj więcej

Wyposażenie i metody badawcze ZPCM

Wyposażenie

  1. Spektrofotometr UV/VIS NanoDrop2000
  2. Wirówka Eppendorf 5430R
  3. Thermostat Plus Eppendorfa z wyposażeniem
  4. Analizator składu ciała BioScan 920-2 Maltron
  5. Inkubator CO2-O2 NU-4950E Autoflow z płaszczem wodnym i regulacją wilgotności
  6. Komora laminarna Biohazard NU 480-400E z wyposażeniem
  7. Mikroskop badawczy OLYMPUS IX51 do prowadzenia obserwacji techniką jasnego pola, kontrastu fazowego i fluorescencji.
    Mikroskop z wyposażeniem do mikrofotografii (Kolorowa kamera cyfrowa OLYMPUS UC30, oprogramowanie OLYMPUS CellSens Entry).
  8. Łaźnia wodna z wytrząsaniem B5-11
  9. Trans-Blot Turbo  System, aparat do ultra szybkiego transferu metodą półsuchą do 4 małych i dwóch średnich zeli
  10. Mini-PROTEAN Tetra Cell, aparat do elektroforezy białek i kwasów nukleinowych

Metody badawcze

  1. Klamra hiperinsulinemiczna normoglikemiczna
  2. Kalorymetria pośrednia
  3. Analiza składu ciała metodą impedancji bioelektrycznej
  4. Ocena stężeń wybranych białek w surowicy metodą ELISA
  5. Biopsja mięśnia obszernego bocznego uda
  6. Biopsja tkanki tłuszczowej podskórnej brzusznej
  7. Izolacja komórek jednojądrzastych krwi obwodowej
  8. Analiza ekspresji genów w tkankach metodą RT-PCR
  9. Analiza zawartości białek w tkankach metodą Western blot
  10. Hodowle komórek mięśni szkieletowych

Czytaj więcej

PNEUFISH

logotypy_pneufish

Mamy kolejny duży projekt unijny. Projekt zatytułowany „Pneumatyczna metoda pozyskiwania ikry ryb – możliwości aplikacyjne oraz wpływ na parametry jakościowe i ilościowe gamet oraz dobrostan tarlaków” (Akronim: PNEUFISH) uzyskał akceptację Ministerstwa Rolnictwa i Rozwoju Wsi i będzie realizowany w latach 2010 – 2015 w ramach Programu Operacyjnego „Zrównoważony rozwój sektora rybołówstwa i nadbrzeżnych obszarów rybackich 2007-2013” (akronim PO RYBY; Oś priorytetowa 3.5 – Projekty Pilotażowe). Projekt będzie realizowany przez Zespół Biologii Gamet i Zarodka wraz z pięcioma gospodarstwami rybackimi, wybranymi w ramach procedury przetargowej. Kwota uzyskanego wsparcia finansowego wynosi 8 655 812 zł. Dalekosiężnym celem Projektu jest opracowanie i doskonalenie metod chowu i hodowli ryb oraz rozwój badań w zakresie rybactwa śródlądowego (Cele generalne Programu Operacyjnego RYBY). Szczegółowym celem naukowo-badawczym i praktycznym Projektu jest opracowanie i ewentualne wdrożenia innowacyjnej metody pozyskiwania oocytów ryb z zastosowaniem sprężonego gazu w produkcji ryb łososiowatych, jesiotrowatych oraz szczupaka.

Próbnie przeprowadzone tarło ryb łososiowatych i jesiotrowatych z zastosowaniem wspomnianej metody pozwoliło na znaczne skrócenie czasu wycierania ryb oraz pozyskanie gamet o bardzo dobrej jakości. Metoda ta stwarza nowe możliwości nie tylko w hodowli ryb łososiowatych w Polsce, ale i innych gatunków, których samice owulują ikrę do jamy ciała. Projekt ma za zadanie dostosowanie parametrów metody do specyfiki biologicznej kilku gatunków ryb, których produkcje prowadzi się na terenie Polski. Szczególna uwaga poświęcona będzie możliwości pozyskiwania tą drogą ikry ryb jesiotrowatych. Potencjałem metody pneumatycznego pozyskiwania oocytów jest efektywność i prędkość, z jaką pozyskuje się oocyty (4-10 krotnie szybciej niż metodami klasycznymi) oraz jej niską inwazyjność dla ryb zapewniającą doskonałe warunki dobrostanu tarlaków.

Realizacja projektu:

dr Radosław Kajetan Kowalski
Zespół Biologii Gamet i Zarodka
e-mail: r.kowalski@pan.olsztyn.pl ; tel. +48 89 539 31 33

Czytaj więcej

Biuro Wspierania Badań

Sekcja komunikacji i współpracy międzynarodowej

Iwona Kieda
Kierownik sekcji
e-mail: i.kieda@pan.olsztyn.pl
tel. +48 887 808 ​082

Tomasz Jeliński
e-mail: t.jelinski@pan.olsztyn.pl
tel. +48 89 500 32 22

Justyna Banasiak
Specjalistka ds. realizacji projektu
e-mail: j.banasiak@pan.olsztyn.pl
tel: +48 89 500 32 21

Krzysztof Wilczek
Specjalista ds. grantów
e-mail: k.wilczek@pan.olsztyn.pl
tel: +48 89 500 32 23

Edyta Jermakow (projekt: ERA Chair „WELCOME2”) 
Brand manager / Specjalistka ds. realizacji projektu
e-mail: e.jermakow@pan.olsztyn.pl
tel: +48 89 500 32 23

Joanna Nykiel (projekt: Pathways2Synergies „CROSSPATHS”) 
Specjalistka ds. realizacji projektu
e-mail: j.nykiel@pan.olsztyn.pl
tel: +48 89 500 32 23

Sekcja rozwoju i projektów inwestycyjnych

Katarzyna Capłap
Kierownik sekcji
e-mail: k.caplap@pan.olsztyn.pl
tel. +48 89 500 32 35

Janusz Wróblewski
Specjalista ds. nieruchomości
e-mail: j.wroblewski@pan.olsztyn.pl
tel. +48 89 500 32 37

Katarzyna Gawdzińska-Duda
Specjalista ds. Funduszy Strukturalnych
e-mail: k.gawdzinska-duda@pan.olsztyn.pl
tel. +48 89 500 32 36

Sekcja monitoringu i rozliczeń projektów

Anna Gwizdek-Wiśniewska
Kierownik sekcji
e-mail: a.gwizdek-wisniewska@pan.olsztyn.pl
tel. +48 89 500 32 30

Monika Wysocka-Kawa
Specjalista ds. rozliczeń finansowych
e-mail: m.wysocka-kawa@pan.olsztyn.pl
tel. +48 89 500 32 30

Natalia Grodzka
Specjalista ds. rozliczeń finansowych
e-mail: n.grodzka@pan.olsztyn.pl
tel. +48 89 500 32 30

Sekcja rozwoju i zasobów ludzkich

Sebastian Zieliński
HR Development Manager
e-mail: s.zielinski@pan.olsztyn.pl
tel. +48 89 500 32 40

Agnieszka Sikorska
Starszy specjalista ds. rozwoju zasobów ludzkich
e-mail: a.sikorska@pan.olsztyn.pl
tel. +48 89 500 32 41

Czytaj więcej

Oddział Nauk o Żywności

Kontakt:

dr hab. Barbara WRÓBLEWSKA, prof. nadzw.
Zastępca Dyrektora ds. Naukowych
e-mail: b.wroblewska@pan.olsztyn.pl
tel. +48 89 523 46 88
fax: +48 89 524 01 24

ZAKŁAD BIOSENSORÓW

kontakt: prof. dr hab. Jerzy Radecki
tel. +48 89 523 46 12; e-mail:j.radecki@pan.olsztyn.pl

  • potencjometria,
  • cykliczna woltamperometria,
  • spektroskopia impedancyjna,
  • waga kwarcowa,
  • pomiar kąta zwilżalności,
  • mikroskopia sił atomowych,
  • mikroskopia prądu tunelowania,
  • skaningowa mikroskopia elektrochemiczna,
  • metoda rezonansu plazmonów powierzchni.

ZAKŁAD IMMUNOLOGII I MIKROBIOLOGII ŻYWNOŚCI

kontakt: dr hab. Barbara Wróblewska, prof. nadzw.
tel. +48 89 523 46 88; e-mail: b.wroblewska@pan.olsztyn.pl

I. Weryfikacja przydatności technologicznej materiału biologicznego:

  • badanie aktywność fermentacyjnej szczepów,
  • screening aktywności enzymatycznej,
  • badanie żywotności/przeżywalności  szczepów w produktach spożywczych świeżych i po przechowywaniu,
  • badanie wrażliwość na czynniki technologiczne (tj. temperatura, ciśnienie, pH, i inne;  standardowo na podłożach wybiórczych, selektywnych lub namnażających),

II. Weryfikacja aktywności prozdrowotnej kultur bakteryjnych:

  • badanie zdolności adhezji do śluzu i komórek nabłonkowych,
  • badanie aktywności antybakteryjnej wobec patogenów przewodu pokarmowego (Salmonella, Escherichia coli, Staphylococcus aureus, i inne wg potrzeby),
  • badanie oporności szczepów na antybiotyki,
  • badanie przeżywalności w niekorzystnych warunkach przewodu pokarmowego,
  • zdolność stymulacji równowagi mikroflory jelitowej,
  • badanie właściwości immunomodulacyjnych,
  • badanie właściwości pro-/antyalergicznych,

III. Ocena jakości mikrobiologicznej produktów spożywczych i surowców roślinnych (wg obowiązujących norm)

  • molekularna jakościowa charakterystyka ekosystemów bakteryjnych (produkty spożywcze, treść przewodu pokarmowego, kał ludzi i zwierząt) metodą PCR-DGGE na poziomie eubakterii lub wybranej grupy/rodzaju bakterii. Analiza może być prowadzona na materiale uzyskanym z badań in vitro oraz in vivo;
  • identyfikacja molekularna bakterii do gatunku metodą PCR z wykorzystaniem starterów komplementarnych do 16S rRNA;
  • typowanie molekularne szczepów bakterii metodą PCR-RAPD.

IV. Oznaczenie wpływu materiału biologicznego (np. składniki pokarmowe takie jak białka, cukry oraz leki i inne związki) na:

  • aktywność metaboliczną komórek Caco-2 (wykazujących cechy morfologiczno-fizjologiczne zbliżone do enterocytów jelitowych);
  • sekrecję cytokin przez komórki Caco-2;
  • na adhezję bakterii prozdrowotnych i patogennych do komórek Caco-2.

V. Analiza białek metodą elektroforezy dwukierunkowej z wykorzystaniem systemu:

  1. Aparat (Ettan IPGPhor 3), przystosowany do jednoczesnego wykonania ogniskowania w 12 paskach żelowych o różnym zakresie pH i długości od 7-24 cm. Aparat umożliwia wykonywanie analiz techniką DIGE.
  2. Aparat pionowy (Etan DALT six), posiadający wbudowany wymiennik ciepła oraz pompę cyrkulacyjną, przystosowany do wykonania rozdziałów w żelu z użyciem pasków o długości od 7 do 24 cm.
  3. Skaner optyczny (ImageScanner III) umożliwiający analizę densytometryczną żeli i blotów w trybie światła przechodzącego i odbitego.
  4. Oprogramowanie (IMAGE MASTER 2D PLATINUM v.6.0) posiadające funkcje automatycznej i manualnej detekcji spotów, analizę jakościową i ilościową spotów, możliwość porównania kilku żeli w stosunku do żelu referencyjnego, określanie mas cząsteczkowych i wartości pI w stosunku do standardów, normalizację wyników, analizę plików zapisanych w różnych formatach, analizę statystyczną. Oprogramowanie kompatybilne z zestawem do wycinania spotów i dalszej analizy (w tym analizy spektrometrii mas) spotów.

VI. Alergia pokarmowa

  • analiza specyficznych immunoglobulin E (całkowita i specyficzne IgE), metoda ImmunoCap i Euroline
  • analiza poziomu alergennych białek w żywności -mleko (kazeina, β-laktoglobulina), soja, orzeszki ziemne, gluten, jajo, metoda ELISA.

ZAKŁAD CHEMII I BIODYNAMIKI ŻYWNOŚCI

kontakt: prof. dr hab. Henryk Zieliński
tel. +48 89 523 46 06; e-mail: h.zielinski@pan.olsztyn.pl

  • badanie poziomu metabolitów fitozwiązków w płynach biologicznych i tkankach organizmów;
  • analiza biomarkerów metabolizmu spożycia żywności pochodzenia roślinnego;
  • badanie biodostępności składników żywności i wyznaczanie parametrów farmakokinetycznych;
  • analiza metabolomu roślin;
  • ilościowa i jakościowa analiza fitozwiązków:
    • antocyjanów;
    • flawonoli;
    • proantocyjanidyn;
    • izoflawonów;
    • flawononów;
    • katechin;
    • kwasów fenolowych;
    • oligosacharydów;
    • glukozynolanów;
    • produktów degradacji glukozynolanów;
    • tokoferoli;
    • tokotrienoli;
    • fitynianów;
    • związków P6 – P4;
    • kwasów tłuszczowych;
    • witaminy C;
    • betalain;
    • zredukowanego (GSH) i utlenionego glutationu (GSSG).
  • analiza właściwości przeciwutleniających:
    • TEAC;
    • DPPH;
    • ORACFL;
    • PRTC;
    • fotochemiluminescencja,
  • analiza produktów postępu reakcji Maillarda:
    • furozyny;
    • indeksu FAST;
    • fluorescencji pośrednich produktów postępu reakcji Maillarda;
    • indeksu brązowienia.
  • analiza pochodnych podofilotoksyny;
  • badania dostępności enzymatycznej produktów żywnościowych (in vitro);
  • badania właściwości fizykochemicznych surowców, produktów i komponentów żywności oraz ocena cech technologicznych doświadczalnych produktów wypiekowych;
  • analiza skrobi, sacharydów, skrobi amylazoopornej i błonnika oraz analiza białek metodą rozdziału elektroforetycznego na żelach poliakrylamidowych;
  • pomiary właściwości reologicznych hydrokoloidów, substancji lepkoelastycznych lub pseudoplastycznych, cieczy nie-Newtonowskich;
  • pomiary układów dwufazowych (właściwości pianotwórcze, emulsyjne);
  • analiza właściwości aeracyjnych; tworzenie układów emulsyjnych, m.in. mieszanin kwasów żółciowych w badaniach pojemności sorpcyjnej wobec kwasów żółciowych.

ZAKŁAD CHEMICZNYCH I FIZYCZNYCH WŁAŚCIWOŚCI ŻYWNOŚCI

kontakt: prof. dr hab. Ryszard Amarowicz
tel. +48 89 523 46 27, e-mail: r.amarowicz@pan.olsztyn.pl

  • Określenie mikrostruktury agromateriałów i żywności w skaningowym mikroskopie elektronowym i mikroskopie optycznym;
  • Komputerowa analiza żywności (DIA);
  • Analiza termodynamicznych właściwości metodą DSC;
  • Analiza właściwości mechanicznych (Instron, Texture Analyzer);
  • Analiza oligosacharydow metodą HPLC-RI;
  • Analiza kwasów fenolowych, flawonoidów i lignanów metodą HPLC-DAD;
  • Analiza białek i peptydów metodą SE-HPLC;
  • Hydroliza enzymatyczna białek.

ZAKŁAD BIOLOGICZNYCH FUNKCJI ŻYWNOŚCI

kontakt: prof. dr hab. Zenon Zduńczyk
tel. +48 89 523 46 71, e-mail: z.zdunczyk@pan.olsztyn.pl

  • perfuzja jelita cienkiego, wykorzystywana w ocenie biodostępności wybranych składników oraz ich wpływu na absorpcyjną funkcję jelit,
  • oznaczenie aktywności wybranych enzymów endogennych (sacharazy, maltazy, laktazy, aminopeptydazy) i mikrobiologicznych (α- i β-glukozydaz, α- i β-galaktozydaz oraz β-glukuronidazy) oraz produktów procesów fermentacyjnych (LKT, amoniak) w treści przewodu pokarmowego,
  • oznaczenie biomarkerów metabolizmu i zdrowia zwierząt, w tym statusu antyoksydacyjnego organizmu (m. in. analiza biochemicznych i enzymatycznych wskaźniki krwi),
  • zastosowanie technik farmakologicznych w badaniach funkcjonalnych właściwości składników diet, z wykorzystaniem indukowanej cukrzycy i zapalenia okrężnicy,
  • immunohistochemiczna lokalizacji białek na preparatach histologicznych
  • izolacja i hodowla komórkowa: keratynocytów i fibroblastów skóry
  • ekstrakcje RNA z tkanek i hodowli komórkowych w celu wykazania ekspresji określonych genów metoda qRT-PCR
  • ekstrakcje białka z tkanek i hodowli komórkowych w celu wykazania ekspresji i aktywności białek metodą Western blot i zymografii
  • transfekcje keratynocytów oraz fibroblastów skóry plazmidem zawierającym określone/wymagane cDNA

ZAKŁAD PROFILAKTYKI CHORÓB METABOLICZNYCH

kontakt: prof. dr hab. Marek Strączkowski
e-mail: m.straczkowski@pan.olsztyn.pp

Metody badawcze

  1. Klamra hiperinsulinemiczna normoglikemiczna
  2. Kalorymetria pośrednia
  3. Analiza składu ciała metodą impedancji bioelektrycznej
  4. Ocena stężeń wybranych białek w surowicy metodą ELISA
  5. Biopsja mięśnia obszernego bocznego uda
  6. Biopsja tkanki tłuszczowej podskórnej brzusznej
  7. Izolacja komórek jednojądrzastych krwi obwodowej
  8. Analiza ekspresji genów w tkankach metodą RT-PCR
  9. Analiza zawartości białek w tkankach metodą Western blot
  10. Hodowle komórek mięśni szkieletowych

LABORATORIUM MIKROBIOLOGICZNE

kontakt: dr inż. Anna Majkowska
tel. +48 89 523 46 02, e-mail: a.majkowska@pan.olsztyn.pl

Oferujemy wykonanie analiz mikrobiologicznych żywności oraz pasz metodami uwzględniającymi indywidualne wymagania Zleceniodawców. Pracownicy Laboratorium służą pomocą w zakresie doboru metod i interpretacji wyników badań.

LABORATORIUM SENSORYCZNE

kontakt: dr hab. Agnieszka Troszyńska, prof. nadzw.
tel. +48 89 523 46 26, e-mail: a.troszynska@pan.olsztyn.pl
Laboratorium Sensoryczne oferuje przeprowadzanie analiz sensorycznych żywności oraz szkolenia sensoryczne w zakresie teoretycznym i praktycznym.
Obejmują one:

  1. Selekcje, szkolenie i monitorowanie zespołu oceniającego.
  2. Metody różnicowe oraz statystyczną interpretację wyników.
  3. Metody ilościowe oraz statystyczną interpretację wyników.
  4. Metody sensorycznej analizy opisowej oraz statystyczną interpretację wyników.

Stronom zainteresowanym oferujemy pomoc w zorganizowaniu nowoczesnego, skomputeryzowanego laboratorium.
Metody statystyczne stosowane do interpretacji wyników badań:

  • Analiza wariancji ( jednoczynnikowa i wieloczynnikowa);
  • Analiza regresji  (prosta i wielokrotna);
  • Analiza składowych głównych (Principal Component Analysis – PCA);
  • Analiza skupień;
  • Metoda cząstkowych najmniejszych kwadratów (Partial Least Square Regression – PLS);
  • Przygotowanie mapy preferencji na bazie analitycznych wyników sensorycznych i ocen konsumenckich- preference mapping;

Szkolenia prowadzone są w nowoczesnej Pracowni Analizy Sensorycznej spełniającej wymagania normy PN-ISO 8589:1998, wyposażonej w 12 indywidualnych stanowisk. Skomputeryzowany system sensoryczny (FIZZ, Biosystemes, Francja) wykorzystywany jest do realizacji szkoleń, badań oraz opracowywania wyników.

Czas trwania szkolenia: w zależności od tematyki szkolenie trwa od 1 do 3 dni.

Liczba uczestników: minimalna ilość uczestników 6 osób, maksymalna 12.

PRACOWNIA METABOLOMIKI

kontakt: dr Wiesław Wiczkowski
tel. +48 89 523 46 04, e-mail: w.wiczkowski@pan.olsztyn.pl

  • Badanie poziomu metabolitów fitozwiązków w płynach biologicznych i tkankach organizmów;
  • Analiza biomarkerów metabolizmu spożycia żywności pochodzenia roślinnego;
  • Badanie biodostępności składników żywności i wyznaczanie parametrów farmakokinetycznych;
  • Analiza metabolomu roślin;
  • Ilościowa i jakościowa analiza fitozwiązków.

Czytaj więcej

Oddział Biologii Rozrodu

Kontakt:

  1. Prof. dr hab. Dariusz Skarżyński
    Zastępca Dyrektora ds. Naukowych
    tel. +48 89 531 39 31, e-mail: d.skarzynski@pan.olsztyn.pl

  2. Joanna Murawska-Kempa
    Sekretariat Oddziału
    tel +48 89 535 74 22 e-mail: j.murawska-kempa@pan.olsztyn.pl

ZAKŁAD IMMUNOLOGII I PATOLOGII ROZRODU

kontakt: prof. dr hab. Dariusz Skarzyński
tel. +48 89 539 31 30, e-mail: d.skarzynski@pan.olsztyn.pl

  1. Metody in vivo:
    • metody biotechniki rozrodu świń i krów: synchronizacja rui, superowulacja, inseminacja;
    • ultrasonograficzna (USG) diagnostyka narządów rodnych świni, krowy i klaczy;
    • laparotomia świń i krów: kaniulacja naczyń krwionośnych układu rodnego; mikrodializa ciałek żółtych i innych struktur narządu rodnego;
    • przyżyciowe pozyskiwania jajników i ciałek żółtych krów (poprzez laparotomię lub kolpotomię);
    • biopsje błony śluzowej macicy krowy i klaczy.
  2. Metody in vitro:Izolacja enzymatyczna i hodowle komórkowe:
    • komórki nabłonka i tkanki łącznej błony śluzowej macicy świni, krowy, klaczy i kotki,
    • komórki steroidogenne ciałka żółtego krowy, klaczy i kotki,
    • komórki warstwy ziarnistej pęcherzyka jajnikowego krowy,
    • komórki śródbłonka naczyń  krwionośnych ciałka żółtego i błony śluzowej macicy krowy, klaczy i kotki,
    • komórki nabłonkowe zatoki mlekonośnej wymienia krowy.

    Inkubacje tkankowe:

    • skrawki błony śluzowej macicy świni, krowy, klaczy i kotki,
    • skrawki ciałka żółtego świni, krowy i klaczy,
    • skrawki zatoki mlekonośnej wymienia krowy.
  3. Metody analityczne3.1  Metody biologii molekularnej:
    • ekspresja czynników pro- i antyapaptotycznych ( TNFα, IFNγ, IL-1α, Il-6, FasL, BCL2, BAX, Caspase3, Caspase8) i ich receptorów,
    • ekspresja enzymów szlaku steroidogenezy (3β-HSD, StAR, CYP450),
    • ekspresja enzymów szlaku metabolizmu kwasu arachidonowego:
      • szlak powstawania leukotrienów (5-LOX) i ich receptorów
      • szlak powstawania prostaglandyn (PTGS-2, PGES, PGFS, 9KPGR, AKR1B5)
    • ekspresja enzymów związanych z syntezą kwasu lizofosfatydowego (PLD i PLA2) i jego receptorów (LPA1, LPA2, LPA3, LPA4),
    • ekspresja oksytocyny i  jej receptora,
    • ekspresja czynnika wzrostu nerwów i jego receptorów (TrkA, p75) na poziomie mRNA metodą RT Real Time PCR i semiquantitative RT PCR oraz białka metodą Western-blot,

    3.2  Immunoizotopowe oznaczanie (RIA) stężeń:

    • hormonów białkowych (LH, PRL) i receptorów LH/hCG z użyciem preparatów znakowanych jodem (J-125),
    • hormonów steroidowych (P4, A4, T, E1, E2, kortyzol), prostaglandyn oraz metabolitu PGF2α – PGFM z użyciem hormonów znakowanych trytem (H3) oraz wykonywanie jodowań hormonów białkowych (LH, PRL) i cytokin (IL-1β, IL-6, TNF-α),

    3.3  Immunoenzymatyczne oznaczanie stężeń (ELISA):

    • hormonów białkowych (LH),
    • hormonów steroidowych (P4, T4, E2, kortyzol),
    • prostaglandyn (PGE2, PGF2α) oraz metabolitu PGF2α – PGFM,
    • oksytocyny i endoteliny przy zastosowaniu hormonów znakowanych peroksydazą chrzanową (HRP) lub biotyną,

    3.4  Immunocytochemiczna lokalizacja:

    • enzymów szlaku przemian kwasu arachidonowego w jajniku, macicy oraz komórkach nabłonkowych zatok mlekonośnych (PTGS-2, PGES, PGFS, AKR1B5, 5-LO),
    • cytokin w jajniku i macicy (TNF-α, IL-1α, IL-1β i innych),
    • enzymów szlaku przemian cholesterolu w jajniku (P450scc, 3β-HSD, aromatazy) oraz komórkach nabłonkowych zatok mlekonośnych (11β-HSD, 3β-HSD),
    • receptorów (TNFR I, TNFR II, IL-1αR, IL-1 βR, LTRI, LTRII, GC-R, LPAR-1, LPAR-2, LPAR-3, LPAR-4, LPAR4, OTR, TrkA, p75),
    • neuroprzekaźników i ich markerów (NPY, VIP, SOM, SP, GAL, CGRP, PACAP, DβH, VACHT, nNOS),

    3.5  Analiza parametrów krytycznych i gazometrii krwi:
    Analiza parametrów gazometrii, elektrolitów i oksymetrii przy zastosowaniu analizatora parametrów krytycznych RAPIDpoint 405 (SIEMENS).

    3.6  Morfometryczna analiza krwi:
    Podstawowe i rozszerzone badania morfologiczne krwi bydła, kozy, owcy, konia, świni, kota, psa, królika, świnki morskiej, szczura oraz myszy, przy zastosowaniu analizatora hematologicznego ADVIA 2120i (SIEMENS).

    3.7  Immunochemiczna–chemiluminescencyjna analiza krwi:
    Oznaczanie hormonów steroidowych (P4, T, E2, kortyzol) oraz markerów stanu zapalnego (Il-1β, TNF-α, IL-10, LBP), przy zastosowaniu analizatora immunochemicznego IMMULITE®1000 (SIEMENS).

    3.8  Metody proteomiczne: 2D, 2D-DIGE i MALDI-TOF/TOF w celu określenia:

    • enzymów szlaku przemian kwasu arachidonowego w jajniku, macicy oraz komórkach nabłonkowych zatok mlekonośnych (PTGS-2, PGES, PGFS, AKR1B5, 5-LO),
    • białek, które mogą być odpowiedzialne za wczesną zamieralność zarodków u świń,
    • enzymów szlaku przemian cholesterolu w jajniku (P450scc, 3β-HSD, aromatazy) oraz komórkach nabłonkowych zatok mlekonośnych (11β-HSD, 3β-HSD),
    • białek związanych z formowaniem, funkcjonowaniem oraz regresją ciałka żółtego.

    3.9  Koimmunoprecypitacja

    • Określenie związków wiążących 17-β-estradiol.

ZAKŁAD MECHANIZMÓW DZIAŁANIA HORMONÓW

kontakt: dr hab. Agnieszka Blitek prof. nadzw.
tel. +48 89 539 31 12, e-mail: a.blitek@pan.olsztyn.pl
  1. Oznaczanie zawartości hormonów i prostaglandyn metodą RIA i EIA;

  2. Izolacja i hodowla:

    • komórek błony śluzowej macicy świni,
    • komórek błony mięśniowej macicy,
    • komórek śródbłonka naczyń,
    • komórek nabłonkowych jajowodu,
    • komórek lutealnych,
    • komórek granulozy,
    • komórek trofoblastu,
    • komórek przysadki,

  3. Pozyskiwanie, hodowla in vitro, kriokonserwacja oraz transfer niechirurgiczny zarodków świni;

  4. Barwienia i analiza histologiczna tkanek i narządów układu rozrodczego;

  5. Barwienia immunohistochemiczne i immunofluorescencyjne;

  6. Skaningowa i transmisyjna mikroskopia elektronowa;

  7. Analiza Western blot;

  8. Izolacja i oczyszczanie kwasów nukleinowych;

  9. Analiza jakościowa i ilościowa DNA i RNA;

  10. Badanie ekspresji genów metodą real-time PCR;

  11. Analiza Southern blot;

  12. Transfekcje komórek wektorami plazmidowymi.

ZAKŁAD FIZJOLOGII I TOKSYKOLOGII ROZRODU

kontakt: prof. dr hab. Jan Kotwica
tel. +48 89 539 31 15, e-mail: j.kotwica@pan.olsztyn.pl

  1. Przygotowanie materiału do badań:
    • Izolacja komórek: ciałka żółtego, myometrium, endometrium, nabłonka jajowodu,
    • Hodowle komórek i skrawków: inkubator (BB 6060, Heraeus, Niemcy);
  2. Metody analityczne i pomiarowe:
  • Ocena przeżywalności komórek (test cytotoksyczności): czytnik ELISA (Multiscan EX, Labsystems, Finlandia)
  • Enzymoimmunologiczne oznaczanie hormonów steroidowych, białkowych i prostaglandyn (czytnik ELISA, Multiscan EX,Labsystems)
  • Klasyczna technika PCR i jej modyfikacje: RT-PCR, nested-PCR, touchdown PCR (system dokumentacji żeli MiniBIS Pro)
  • Pomiar zmian ekspresji genów metodą RT PCR i Real-time PCR:
  • izolacja RNA, (spektrofotometr BioPhotometr, Eppendorf, oraz spektrofotometr Nonodrop)
    • odwrotna transkrypcja, PCR (termocykler MJ Mini BioRad)
    • system detekcji dla Real-time PCR (APB Prism 7300 Applied Biosystems, USA)
    • system do analizy obrazu MiniBIS Pro (DNR Bio Imaging System, Israel)
  • 5’ i 3’ RACE PCR – szybka amplifikacja końców cDNA
  • Pomiar ilości białka metodą Western Blot: Mini PROTEAN 3 System (system dokumentacji żeli MiniBIS Pro).
  • Pomiar mobilizacji wewnątrzkomórkowych jonów Ca2+ z wykorzystaniem barwnika fluorescencyjnego Fura 2 (mikroskop Nikon Eclipse TS 100 z oprogramowaniem do analizy NIS-Elements Basic Research),
  • Immunohistochemia (kriostat, analiza obrazu – mikroskop Imager Z1-Zeiss z oprogramowaniem Axio Vision 4.8).
  • Pomiar aktywności motorycznej (kurczliwości) skrawków myometrium i jajowodu: tensometr (Hugo Sachs Elektronik, Niemcy – urządzenie na stanie ZLRF)
  • Oznaczanie katecholamin metodą HPLC z detekcją elektrochemiczną (Hewlett-Packard, Series 1050)

ZAKŁAD LOKALNYCH REGULACJI FIZJOLOGICZNYCH

kontakt: dr hab. n.wet. Barbara Wąsowska prof. nadzw.
tel. +48 89 539 31 25, e-mail: b.wasowska@pan.olsztyn.pl1. Metody in vivo

  • pomiar prędkości przepływu krwi w tętnicy macicznej świni z zastosowaniem elektromagnetycznego transducera (elektromagnetic flowmeter RT500 Narcomatic) w znieczuleniu ogólnym
  • pomiar ciśnienia wewnątrzmacicznego/pośrednio aktywności skurczowej macicy świni (Bridge Amp AD Instruments) w znieczuleniu ogólnym
  • metody biotechniki rozrodu u owiec: synchronizacja owulacji owiec (gąbki dopochwowe) i przyspieszanie sezonu rozrodczego (implanty melatoniny) do celów doświadczalnych
  • laparotomia pośrodkowa świń i owiec: owariektomia, histerektomia, wywoływanie ischemii macicy przez zamknięcie tętnicy macicznej świni, przyżyciowe pobieranie skrawków macicy, implantowanie kaniul do naczyń krwionośnych krezki macicy świni w celu wielogodzinnego pobierania krwi i/lub infuzji substancji biologicznie aktywnych (np. hormonów) w znieczuleniu ogólnym
  • implantowanie kaniul do naczyń krwionośnych głowy i szyi u świni, owcy, królika w znieczuleniu ogólnym
  • długotrwałe (12-godzinne) pobieranie płynu mózgowo-rdzeniowego z III komory mózgu u owiec
  • długotrwałe pobieranie krwi z żyły szyjnej zewnętrznej u świń i owiec
  • ciągłe monitorowanie saturacji krwi tlenem oraz nasycenie wydychanego powietrza dwutlenkiem węgla przy zastosowaniu pulsoksymetru z detektorem CO2 (Nonin Medical Inc.9847V) w znieczuleniu ogólnym

2. Metody ex vivo

  • badania aktywności skurczowej żył powierzchownych głowy świni (żyły czołowa, nosowa, twarzowa)
  • badania aktywności skurczowej izolowanych tętnic układu rozrodczego samicy świni (tętnica maciczna)
  • badania na izolowanej głowie świni, owcy, królika perfundowanej autologiczną krwią
  • badania na izolowanym jajniku, macicy (świni), jadrze (świnia, szczur) perfundowanych autologiczną krwią

3. Inkubacje tkankowe

  • skrawki podwzgórza świni

4. Metody analitycze

4.1 Metody biologii molekularnej

Ekspresja na poziomie mRNA metodą Real Time PCR (qPCR) lub Real Time PCR z zastosowaniem sondy (qPCR TaqMan) oraz białka metodą western-blot (WB):

  • czynniki związane z produkcją płynu mózgowo-rdzeniowego: VEGF, jego receptory Flt-1, Flk-1 i koreceptor NRP-1, akwaporyna-1,  akwaporyna-4, klaudyna-2 (qPCR, WB) w splocie naczyniówkowym komór mózgu u owiec
  • białka połączeń zamykających limitujących przechodzenie substancji na drodze międzykomórkowej: białka błonowe okludyna, klaudyna-1 i JAM-1 oraz białka cytozolowe ZO-1, ZO-2, ZO-3 i afadyna-6 (qPCR, WB) w splocie naczyniówkowym komór mózgu u owiec
  • białka transporterowe: transtyretyna (TTR) w splocie naczyniówkowym komór mózgu u owiec (qPCR)
  • kompleks receptora lipopolisacharydu (LPS): receptor toll-podobny 4 (TLR4), CD14 i  MD-2 (qPCR) w splocie naczyniówkowym komór mózgu u owiec
  • cytokiny i ich receptory oraz chemokiny: TNFα, IL-1β, IL-6, TNFRI, TNFRII, IL-1R1, IL-1R2, IL-6R, gp130, MCP-1 (qPCR) w splocie naczyniówkowym komór mózgu u owiec
  • metaloproteinazy i ich inhibitory: MMP2, MMP3, MMP9, TIMP-1 i TIMP-3 (qPCR) w splocie naczyniówkowym komór u owiec
  • marker hipoksji HIF-1α w macicy świni (qPCR, WB)
  • białka zegara biologicznego w podwzgórzu świni domowej: BMAL 1, CLOCK, NPAS2, PER 1-3, CRY 1-2 (qPCR TaqMan, WB)
  • receptory jądrowe powiązane z funkcjonowaniem molekularnego zegara biologicznego w podwzgórzu świni domowej: REV-ERB α, REV-ERB β, ROR α, ROR β, ROR γ – (qPCR TaqMan)
  • enzymy antyoksydacyjne w jądrach i najądrzach samca sarny oraz żubra: EcSOD, GpX 4 i GpX 5 (qPCR), SOD-1, Cat (qPCR, WB) oraz SOD-1, SOD-2 w macicy świni (qPCR)
  • receptor leptyny (Ob-Ra i Ob-Rb) w splocie naczyniówkowych komór mózgu oraz w podwzgórzu świni domowej (qPCR, WB)

4.2 Immunoenzymatyczne oznaczanie stężeń w osoczu (ELISA):

  • LPS Binding Protein u owiec
  • IL-6 u owiec

4.3 Immunoizotopowe oznaczanie stężeń (RIA) w osoczu, tkankach, płynach ustrojowych:

  • hormonów tarczycy: T3 i T4 (wolne i całkowite)
  • melatonina
  • hormonów związanych z funkcjonowaniem układu rozrodczego: estradiol, estron, progesteron, testosteron, oksytocyna, prostaglandyna F2α świni
  • hormonów białkowych: prolaktyna (PRL), luteotropina (LH), folikulotropina (FSH), aktywina A i leptyna świni

4.4.Radioizotopowe znakowanie hormonów

  • Jodowanie (J125) oksytocyny, GnRH, FSH, LH, prolaktyny, β-endorfiny

4.5 Immunohistochemiczna lokalizacja (z zastosowaniem fluorochromów):

  • białka c-Fos, produktu genu wczesnej odpowiedzi komórkowej, w strukturach mózgu świni
  • NADPH-diaforazy (metodą histochemiczną) w naczyniach krwionośnych mózgu świni
  • syntaz tlenku azotu iNOS, eNOS w macicy oraz okołojajnikowym kompleksie naczyniowym świni, w jelicie grubym szczura
  • endogennego markera hipoksji HIF-1α w macicy i jajowodach świni
  • enzymów antyoksydacyjnych SOD-1, SOD-2 w narządach układu rozrodczego samicy świni, jelicie grubym myszy
  • czynnika wzrostu śródbłonka naczyń VEGF oraz jego receptorów Flt-1, Flk-1 w splocie naczyniówkowym komór mózgu owcy białka antyapoptotycznego cFLIP w narządach układu rozrodczego samicy świni
  • komórek apoptotycznych metodą TUNEL (Terminal Transferase dUTP Nick End Labeling) w macicy świni, jelicie grubym szczura
  • enzymu hydroksylazy dopaminowej (DβH) w naczyniach krwionośnych głowy (żyła twarzowa, nosowa, czołowa) oraz okołojajnikowego kompleksu naczyniowego świni
  •  receptora leptyny w splocie naczyniówkowym mózgu oraz w podwzgórzu świni
  • receptora TLR4 (toll-like receptor) oraz CD14 w splocie naczyniówkowym komór mózgu owcy

4.6 Analiza gęstości optycznej wyrażonej w jednostkach densytometrycznych

  • pomiary intensywności reakcji barwnej obserwowanej w mikroskopie z zastosowaniem programu Axio Vision Rel. 4.8.2

ZAKŁAD BIOLOGII GAMET I ZARODKA

kontakt: prof. dr hab. Andrzej Ciereszko
tel. +48 89 539 31 36, e-mail: a.ciereszko@pan.olsztyn.pl

  1. Wyznaczenie pI oraz masy cząsteczkowej analizowanych białek nasienia kręgowców. Mapowanie białek (protein mapping) plazmy nasienia ryb i ptaków. Analiza profili białkowych.
  2. Izolacja białek i peptydów nasienia kręgowców, określenie podstawowych właściwości fizykochemicznych białek.
  3. Izolacja białek i peptydów, rozdział peptydów powstałych w wyniku trawienia białek, przygotowanie preparatów do sekwencjonowania i spektroskopii mas.
  4. Pomiar koncentracji plemników, oznaczenie podstawowych biochemicznych wyznaczników jakości nasienia, pomiar aktywności antyoksydacyjnej nasienia, analizy kinetyczne (określenie stężenia enzymów i inhibitorów, wyznaczenie stałych asocjacji dla oddziaływania inhibitor – proteinaza, wyznaczenie widm białek w zakresie UV i światła widzialnego.
  5. Elektroelucja białek z żelu.
  6. Pomiar koncentracji i przeżywalności plemników.
  7. Ocena stanu genomu plemników.
  8. Wizualizacja profili białkowych plazmy nasienia.
  9. Transfer białek na membranę, analiza Western blot
  10. Pomiar ciśnienia osmotycznego plazmy nasienia
  11. Obserwacja i analiza fluorescencyjna komórek somatycznych i gamet
  12. Rozdziały białek i kwasów rybonukleinowych na żelach poliakrylamidowych i agarozowych.
  13. Transfer białek na membranę, analiza Western Blot

ZAKŁAD BIOLOGII I PATOLOGII ROZRODU CZŁOWIEKA

kontakt: dr Jan Czerniecki
tel. +48 85 746 88 18, e-mail: j.czerniecki@pan.olsztyn.pl

  1. Izolacja DNA i RNA (automatyczna stacja do izolacji kwasów nukleinowych 6100 Nucleic Acid PrepStatus, Applied Biosystems);
  2. Analiza ekspresji genów metodą Real-Time PCR (7500 Real-Time PCR System, Applied Biosystems);
  3. Analiza polimorfizmów genowych metodą sekwencjonowania DNA (3130 Genetic Analyzer, Applied Biosystems);
  4. Analiza ekpresji białek metodą Western-Blot (elektroforeza i elektrotransfer białek oraz immunodetekcja zestaw do elektroforezy poliakrylamidowej białek i mokrego elektrotransferu, Amersham, zestaw do dokumentacji żeli-Uvitec);
  5. Hodowle komórkowe:
    • komora laminarna IVFtech Sterile,
    • inkubator IKS International NB-203XL,
    • mikroskop laboratoryjny w układzie odwróconym OlympusCKX41,
    • zamrażarka niskotemperaturowa Snijders,
    • pierwotne oraz linie komórkowe: m.in. rak janika linia CRL-11731, rak piersi linia MCF7 i MDA-MB-231, fibroblasty linia CRL 1474.

LABORATORIUM BIOLOGII MOLEKULARNEJ

kontakt: dr Monika Kaczmarek
tel. +48 89 539 31 12, e-mail: a.kaczmarek@pan.olsztyn.pl

  1. Elektroforeza SDS-PAGE i detekcja białek metodą Western blot,
  2. Izolacja RNA i DNA,
  3. Ocena czystości, jakości i ilości białek, RNA, sRNA, DNA,
  4. Elektroforeza kwasów nukleinowych,
  5. Analiza ekspresji genów w czasie rzeczywistym (real time PCR),
  6. Globalna analiza ekspresji genów,
  7. Konstrukcja, oczyszczanie wektorów plazmidowych do klonowania genów,
  8. Transfekcja komórek.

LABORATORIUM IN VITRO

Kontakt:
tel. +48 89 539 31 31, e-mail: g.bodek@pan.olsztyn.pl

  1. Cytometria przepływowa
    • Ocena proliferacji komórek (charakterystyka cyklu komórkowego różnych rodzajów komórek w hodowlach)
    • Apoptoza komórek (aneksyna V)
    • Sortowanie wyznakowanych komórek lub molekuł
  2. Mikroskopia konfokalna
    • akwizycja obrazu o wysokiej rozdzielczości w 3 wymiarach
  3. Mikrodysekcja
    • technologia bezkontaminacyjnej izolacji wyciętego materiału
    • izolacja pojedynczych komórek lub fragmentów tkanek z preparatów trwałych
    • izolacja komórek lub klonów komórek z hodowli przeżyciowych
  4. Hodowle komórkowe
    • izolacja klonów komórkowych
    • immortalizacja linii komórkowych
      • lipotransfekcja
      • elektroporacja
    • transfekcje wektorowe
    • bankowanie w ciekłym azocie

PRACOWNIA PROTEOMIKI

kontakt: prof. dr hab. Andrzej Ciereszko
tel. +48 89 539 31 36, e-mail: a.ciereszko@pan.olsztyn.pl

  • Elektroforeza dwukierunkowa (2D) – wyznaczenie punktu izoelektrycznego i masy,  cząsteczkowej białek, analiza profili białkowych;
  • Izolacja białek i peptydów przy użyciu FPLC, określenie podstawowych właściwości fizykochemicznych białek;
  • Pomiar koncentracji plemników;
  • Analizy kinetyczne (określenie stężenia enzymów i inhibitorów, wyznaczenie stałych asocjacji dla oddziaływania inhibitor – proteinaza);
  • Elektroelucja białek z żelu poliakrylamidowego.

PRACOWNIA BIOTECHNIK I BIOTECHNOLOGII ROZRODU

kontakt: prof. dr hab. Jan Glogowski
tel. +48 89 539 31 34, e-mail: j.glogowski@pan.olsztyn.pl
Posiadane obecnie zaplecze laboratoryjne, sprzętowe oraz technologiczne pozwala nam na prowadzenie i rozwijanie na odpowiednio wysokim poziomie  centrum pozyskiwania, oceny, konserwowania oraz przechowywania w ciekłym azocie  rezerw genetycznych wielu gatunków zwierząt. Posiadany system komputerowej analizy nasienia (CASA) umożliwi badanie wpływu różnych czynników, w tym występujących w środowisku toksykantów,  na morfologię i parametry ruchu plemników oraz ocenę ich jakości po kriokonserwacji.

PRACOWNIA IMMUNODIAGNOSTYKI

kontakt: doc. dr hab. Barbara Jana
tel. +48 89 539 31 40, e-mail: b.jana@pan.olsztyn.pl

  1. Immunoenzymatyczne (ELISA) i immunoizotopowe (RIA) oznaczanie stężeń hormonów:

    • hormonów białkowych (LH, PRL) i receptorów LH/hCG z użyciem preparatów znakowanych jodem (J-125)
    • wykonywanie jodowań hormonów białkowych (LH, PRL) i cytokin (IL-1β, IL-6, TNF-α),
    • hormonów steroidowych (P4, A4, T, E1, E2, kortyzol),
    • prostaglandyn (PGE2, PGF2α) oraz metabolitu PGF2α – PGFM
    • oksytocyny i endoteliny przy zastosowaniu hormonów znakowanych peroksydazą chrzanową (HRP) lub biotyną.
  2. Analiza parametrów krytycznych i gazometrii krwi:
    Analiza parametrów gazometrii, elektrolitów i oksymetrii przy zastosowaniu analizatora parametrów krytycznych RAPIDpoint 405 (SIEMENS):

    • gazometria: pH, pCO2, pO2,
    • elektrolity: NA+, K+, Ca++, Cl-,
    • glukoza, HCT,
    • oksymetria: sO2, FO2Hb, FCOHb, FHHb, FMetHb, THb,

    wraz z wieloma wyliczanymi parametrami pochodnymi.

  3. Morfometryczna analiza krwi:

    • dwutorowy pomiar leukocytów w dwóch niezależnych kanałach
    • podstawowe i rozszerzone badania morfologiczne krwi bydła, kozy, owcy, konia, świni, kota, psa, królika, świnki morskiej, szczura oraz myszy, przy zastosowaniu analizatora hematologicznego ADVIA 2120i (SIEMENS).

    Wymagana objętość próbki krwi do badań wynosi 157 µl.

  4. Immunochemiczno–chemiluminescencyjna analiza krwi przy zastosowaniu analizatora immunochemicznego IMMULITE®1000 (SIEMENS):
    • analiza stężeń hormonów nadnerczy/przysadki, płciowych (np. P4, T, E2, kortyzol),
    • analizy z zakresu fizjologii tarczycy,
    • analizy stężeń czynników wzrostu,
    • analiza markerów stanu zapalnego (IL-1β, TNF-α, IL-10, LBP),
    • analiza wskaźników alergii, anemii, cukrzycy,
    • analiza markerów kardiologicznych, chorób zakaźnych, nowotworowych,
    • stężeń leków

    Materiałem do analiz jest surowica, osocze, medium hodowlane.

  5. Analiza specyficznych immunoglobulin E przy zastosowaniu aparatu ImmunoCAP 100:
    • Phadiatop – test przesiewowy różnicujący pacjentów atopowych od nieatopowych,
    • całkowita IgE,
    • całkowita IgE (niski poziom) – dla małych dzieci,
    • specyficzne IgE  – ponad 500 alergenów pojedynczych oraz 70 mieszanek,
    • białko eozynofilowe ECP – monitorowanie leczenia astmy,
    • tryptaza – monitorowanie stanu anafilaksji,
    • gliadyny IgA i IgG – nietolerancja pokarmowa u dzieci,
    • specyficzne IgA w odniesieniu do poszczególnych frakcji mleka,
    • specyficzne IgG oraz IgG4,
    • przeciwciała przeciwtarczycowe: anty-TPO, anty-TG,
    • ponad 22 parametry z zakresu chorób autoimmunologicznych w klasie IgG, IgA,

    W celu wykonania analizy niezbędne jest 40 µl surowicy pacjenta.

  6. Jakościowe oznaczania in vitro ludzkich przeciwciał klasy IgG oraz IgE z zastosowaniem aparatu Euroimmun:
    • Metoda immunoblottingu do oceny swoistych przeciwciał klasy IgE skierowanych przeciwko alergenom w surowicy pacjenta,
    • Dostępne panele zawierające kombinacje alergenów po 20 różnych na jednym pasku testowym (wziewny, pediatryczny wziewny, pokarmowy, atopowy), dwa dla jadów owadów, oraz „Profil pediatryczny” zawierający 27 najpopularniejszych alergenów m.in.: spośród alergenów pokarmowych białko i żółtko jaja, białka mleka, mąka pszenna, ryż, soja, owoce i warzywa, a spośród wziewnych: pyłki traw i drzew, alergeny roztoczy i sierści zwierząt.

    Do wykonania analizy niezbędne jest 100 µl surowicy pacjenta.

  7. Wykrywanie białek czynnościowych (cytokiny, białka efektorowe, receptory, markery powierzchniowe lub przeciwciała) wydzielanych przez pojedyncze komórki przy zastosowaniu zestawu ELISpot (Enzyme-Linked ImmunoSpot Assay).

Adres poczty elektronicznej jest chroniony przed robotami spamującymi. W przeglądarce musi być włączona obsługa JavaScript, żeby go zobaczyć.

Adres poczty elektronicznej jest chroniony przed robotami spamującymi. W przeglądarce musi być włączona obsługa JavaScript, żeby go zobaczyć.

Czytaj więcej

Wyposażenie i metody badawcze ZBFŻ

Wyposażenie:

  • chromatograf cieczowy (UHPLC) sprzężony z trzema detektorami (QMS, PDA, RID) oraz kolektorem frakcji (Shimadzu),
  • analizator biochemiczny Pentra C200 firmy Horiba Medical,
  • analizator hematologiczny Abacus Junior Vet wykorzystywany do badania morfologicznego krwi,
  • młynek kriogeniczny Spex Sample Prep. 6870 stosowany do mielenia/homogenizacji różnorodnych próbek w ciekłym azocie,
  • aparat do stereotaksji mózgowej z systemem do wiercenia i mikroiniekcji firmy Stoelting,
  • termocykler Vapo.protect do analiz PCR firmy Thermos Scientific,
  • spektroskop Unicam Helios α wykorzystywany do oznaczania aktywności wybranych enzymów endogennych i mikrobiologicznych w przewodzie pokarmowym,
  • czytnik mikropłytek Multiskan Sky wykorzystywany do oznaczeń immunochemicznych (Thermo Scientific),
  • przenośny system Reflotron Plus do ilościowego oznaczania parametrów biochemicznych opartych na testach suchej fazy,
  • klimatyzowane pomieszczenia w Zwierzętarni z kompletem wyposażenia do utrzymywania stada matecznego oraz prowadzenia doświadczeń na 120 indywidualnie utrzymywanych szczurach oraz 36 utrzymywanych w klatkach metabolicznych.

Ważniejsze metody badawcze:

  • izolacja mRNA z tkanek oraz analiza ekspresji genów metodą ilościowej reakcji łańcuchowej polimerazy (qPCR) z zastosowaniem starterów oraz sond TaqMan,
  • pomiary masy mięśniowej i tłuszczowej szczurów z wykorzystaniem spektroskopii magnetycznego rezonansu jądrowego (NMR),
  • perfuzja jelita cienkiego wykorzystywana w ocenie biodostępności wybranych składników diety oraz ich wpływu na absorpcyjną funkcję jelita,
  • oznaczanie aktywności wybranych enzymów endogennych (sacharazy, maltazy, laktazy, aminopeptydazy) i mikrobiologicznych (α- i β-glukozydaz, α- i β-galaktozydaz oraz β-glukuronidazy) w przewodzie pokarmowym,
  • oznaczanie metabolitów bakteryjnych w treści przewodu pokarmowego (krótkołańcuchowe kwasy tłuszczowe, kwasy żółciowe, amoniak),
  • oznaczanie biomarkerów metabolizmu i zdrowia zwierząt, w tym odnoszących się do statusu przeciwutleniającego organizmu (m.in. dialdehydu malonowego, wybranych antyoksydantów ustrojowych) oraz biochemicznych krwi (glukoza, cholesterol, trójglicerydy, hemoglobina, aktywność aminotransferaz i inne);
  • zastosowanie technik farmakologicznych i opartych o dietę do indukowania chorób przewlekłych u zwierząt laboratoryjnych (otyłości, cukrzycy, zapalenia okrężnicy i innych),
  • oznaczanie białek za pomocą testów immunoenzymatycznych (ELISA),
  • wykonywanie doustnych testów obciążenia wybranymi cukrami u zwierząt laboratoryjnych, w tym glukozą.

Czytaj więcej