• Queen’s University Belfast, UK
• Quadrum (Institute of Food Research), Norwich, UK
• University Hohenheim, Niemcy
• University of Turin, Włochy
• Firmą IN OVO, Holandia
• Firma Microbion, Włochy
• AZTI Technalia, Bilbao, Hiszpania
• KEKI Central Food Institute, Budapeszt, Węgry
• Obihiro University of Agriculture and Veterinary Medicine, Japonia
• University Pierre and Marie Curie in Paris, CNRS Sorbonne University w Payżu, Francja
• University of Salzburg: Salzburg, Austria
• INRAE, Clermont-Ferrand, Francja

Czytaj więcej

1. Opracowano linie mlecznych napojów fermentowanych o unikatowej recepturze.
2. Potwierdzono hipotezę o immunogenności białek drobnoustrojowych izolowanych z komensalnych, probiotycznych i technologicznie stosowanych szczepów  Lactobacillus.
3. Udowodniono różnicujący wpływ procesu trawienia na profil i immunogenność białek drobnoustrojów w kontekście ich potencjału uwrażliwiającego.
4. Udowodniono różnicujący wpływ składu lipidów, jako dodatku do matrycy stosowanej do hodowli szczepów bakterii fermentacji mlekowej, na profil i immunogenność białek drobnoustrojów.
5. Wskazano na potrzebę wprowadzenia nowego kryterium w ocenie bezpieczeństwa żywności bazującego na badaniach immunoreaktywności białek drobnoustrojów.
6. Wykazano, że surowice ludzkie osób uczulonych na białka mleka krowiego mogą reagować z białkami mleka klaczy na poziomie przeciwciał IgE i IgG, co wskazuje na możliwość wystąpienia reakcji krzyżowych.
7. Wykazano, że sieciowanie białek mleka mikrobiologiczną transglutaminazą powodowało obniżenie immunoreaktywności β-laktoglobuliny i podwyższenie immunoreaktywności α-kazeiny z surowicami pozyskanymi od myszy.
8. Został wyłoniony szczep bakterii (L. acidophilus ACD-1), który wykazuje znaczną zdolność obniżania reaktywności białek mleka klaczy z przeciwciałami IgE pochodzącymi z surowicy pacjentów z alergią na białka mleka krowiego.
9. Stwierdzono, że mleko klaczy poddane fermentacji szczepem L. plantarum 110 wykazuje niską reaktywności IgG z surowicami pacjentów z alergią na białka mleka krowiego.
10. Kwas fitynowy w obecności kwasu masłowego (metabolitu bakterii jelitowych) pobudza procesy śmierci komórkowej kolonocytów nowotworowych, natomiast w kolonocytach zdrowych inicjuje szlaki regeneracji.
11. Hydrolizat kwasu fitynowego obniża nadmierną reakcję prozapalną nowotworowych kolonocytów na bakterie jelitowe, pozostaje jednocześnie neutralny podczas odpowiedzi immunologicznej kolonocytów zdrowych.
12. Wykazano zwiekszoną immunoreaktywność  białek mleka beta-laktoglobuliny i alfa-laktoalbuminy po procesie termizacji.
13. Glikacja owoalbuminy i beta-laktoalbuminy moduluje profil limfocytów T.
14. Wybrane preparaty probiotyczne obniżają odpowiedź humoralną do beta-laktoglobuliny mleka krowiego i modulują profil komórek immunokompetentnych.
15. Wykazano efekt terapeutyczny szczepu S. thermophilus MK-10 and L. bulgaricus 151 na stan zapalny jelita indukowany w modelu mysim poprzez oddziaływanie na mikrobiotę jelitowa i modulację profilu komórek T.

Czytaj więcej

1. „Jogurt z Ogrodu” z dodatkiem miodu i liofilizowanych ziół. „Inkubator Innowacyjności 4.0” ustanowiony przez MNISW i finansowany ze środków europejskich w ramach projektu „Wsparcie zarządzania badaniami naukowymi i komercjalizacja wyników prac B+R w jednostkach naukowych i przedsiębiorstwach” w ramach Programu Operacyjnego Inteligentny Rozwój 2014-2020 (Działanie 4.4). Nr. MNISW/2020/318/DIR –  lider zadania dr Anna Ogrodowczyk.
2. Rola lipidów matrycy mleka w programowaniu immunoreaktywności białek pochodzących z bakterii kwasu mlekowego.” Nr. 2021/43/D/NZ9/02814; (NCN; SONATA 17) – lider projektu dr Anna Ogrodowczyk.
3. Wpływ symulowanych warunków trawienia na zmiany w profilu i immunoreaktywności białek bakterii z rodzaju Lactobacillus. Nr. G KNOW31. Wsparcie: Konsorcjum KNOW „Zdrowe zwierzę – bezpieczna żywność” –  lider zadania dr Anna Ogrodowczyk.
4. Ocena właściwości immunomodulujących zewnątrzkomórkowych czynników wydzielanych przez bakterie kwasu mlekowego. Nr. G KNOW Granty na Granty. Wsparcie: Konsorcjum KNOW „Zdrowe zwierzę – bezpieczna żywność” – lider zadania dr Anna Ogrodowczyk.
5. Wpływ szczepu bakterii probiotycznych Lactobacillus rhamnosus GG na aktywność komórek dendrytycznych myszy z indukowanym stanem nadwrażliwości na β-laktoglobulinę mleka krowiego (β-lg). Nr. G KNOW40. Wsparcie: Konsorcjum KNOW „Zdrowe zwierzę – bezpieczna żywność” – dr hab.inż. Dagmara Zlotkowska.
6. Modyfikowane białka żywności i probiotyki – wpływ na aktywność regulatorowych komórek T i komórek dendrytycznych. Nr. G KNOW11. Wsparcie: Konsorcjum KNOW „Zdrowe zwierzę – bezpieczna żywność”. Kierownik projektu – dr hab.inż. Dagmara Złotkowska.
7. Modulacja odpowiedzi układu immunologicznego śluzówki przewodu pokarmowego porzez indukcję komórek regulatorowych poprzez podawanie natywnych i zglikowanych alergenów pokarmowych owoalbuminy i beta laktoglobuliny razem z probiotykami. Wsparcie NCN; GRANT NUMBER 2011/01/B/NZ9/02727.Kierownik projektu – dr hab.inż. Dagmara Złotkowska.
8. Ocena bezpieczeństwa i aktywności prozdrowotnej własnych i komercyjnych preparatów probiotycznych: badania modelowe na zwierzętach z indukowanym stanem zapalnym okrężnicy. Wsparcie NCN; GRANT NUMBER 2011/01/B/NZ9/07136. Kierownik projektu dr Ewa Wasilewska.
9. Wpływ fosforanów inozytolu i mikrobioty jelitowej na funkcje zdrowych i nowotworowych komórek nabłonkowych jelita grubego. Projekt NCN nr DEC-2013/11/D/NZ9/02783. Kierownik: dr Lidia Markiewicz
10. MicrobiomeSupport – “Towards coordinated microbiome R&I activities in the food system to support (EU and) international bioeconomy goals”, Horizon 2020 CSA (Coordination and Support Action) projekt No 818116, 2018-2022. Przedstawiciel krajowy: dr. Lidia Markiewicz.
11. C-SNIPER: Redukcja Campylobacter poprzez zastosowanie fagów specyficznych dla enteropatogenu. Projekt EIT Food, 2020-2021, kierownik zadania realizowanego w IRZiBŻ PAN – dr Lidia Markiewicz.
12. “#Annual Food Agenda” (Projekt Europejskiego Instytutu Innowacji i Technologii EIT FOOD, Nr. 19169-21 (21105) – wykonawca- dr Joanna Fotschki, dr Anna Ogrodowczyk.
13. C-SNIPER: Redukcja Campylobacter poprzez zastosowanie fagów specyficznych dla enteropatogenu. Projekt EIT Food, 2020-2021, kierownik zadania realizowanego w IRZiBŻ PAN – dr Lidia Markiewicz, wykonawca- dr Anna Ogrodowczyk.
14. V-PLACE: Umożliwienie konsumentom wyboru produktów wegańskich lub wegetariańskich– Projekt EIT Food, 2020-2021, wykonawca- dr Anna Ogrodowczyk, Prof. Barbara Wróblewska.
15. SPIN: SPermidyna i Eugenol zintegrowane działania w zmniejszaniu zachorowalności na koronawirusa w populacji UE, EIT FOOD, 2020, kierownik zadania – dr Anna Ogrodowczyk, dr hab.inż. Dagmara Złotkowska (wykład).
16. Classroom: jako platforma zaangażowania społeczności w produkcję żywności i naukę. Projekt EIT Food, 2020-2021,  wykonawca- dr Anna Ogrodowczyk, dr hab.inż. Dagmara Złotkowska.
17. Szkolene na temat Ukierunkowanego Żywienia „RIS Fall School in Targeted Nutrition” Projekt EIT Food, 2021,  wykonawca- dr Anna Ogrodowczyk.
18. „Wpływ szczepów Lactobacillus i transglutaminazy na immunoreaktywność beta-laktoglobuliny i alfa-kazeiny mleka klaczy” (Projekt Narodowego Centrum Nauki, NCN, Preludium 9, Nr.  2015/17/N/NZ9/03666) – kierownik projektu dr Joanna Fotschki.
19. „CHAMPP: Współczesne wyzwania i problemy w produkcji drobiarskiej” (EIT FOOD) – lider projektu dr Joanna Fotschki.
20. „InformPack: Development of public engagement actions, tools and strategies to enable a sustainable shift in food packaging culture in Europe” (Projekt Europejskiego Instytutu Innowacji i Technologii EIT FOOD, Nr.22205) – główny wykonawca dr Joanna Fotschki.
21. “#Annual Food Agenda” (Projekt Europejskiego Instytutu Innowacji i Technologii EIT FOOD, Nr. 19169-21 (21105) – wykonawca dr Joanna Fotschki.
22. „Immunomodulujące właściwości przefermentowanego napoju serwatkowego wzbogaconego sokiem z aronii oraz kolostrum” Projekt NCN, Preludium Bis 3, No. 2021/43/O/NZ9/00957, Kierownik projektu: prof. dr hab. Barbara Wróblewska.
23. COST Action FA1402 ImpARAS – Poprawa strategii oceny ryzyka alergii dla nowych białek spożywczych – przedstawiciel krajowy: prof. Barbara Wróblewska.
24. COST Action CA18113 – Zrozumienie i wykorzystanie wpływu niskiego pH na mikroorganizmy – przedstawiciel krajowy: prof. Barbara Wróblewska.
25. COST Action FA1005 INFOGEST – Poprawa właściwości zdrowotnych żywności poprzez wymianę wiedzy na temat procesu trawienia- przedstawiciel krajowy: dr Dominika Świątecka.
26. COST Action PIMENTO CA20128 – Promowanie innowacyjności żywności fermentowanej, 2021-2025, przedstawiciel krajowy: dr Lidia Markiewicz.

Czytaj więcej

Metody badawcze

1. Metody in vivo

• pomiar prędkości przepływu krwi w tętnicy macicznej świni z zastosowaniem elektromagnetycznego transducera (elektromagnetic flowmeter RT500 Narcomatic) w znieczuleniu ogólnym
• pomiar ciśnienia wewnątrzmacicznego/pośrednio aktywności skurczowej macicy świni (Bridge Amp AD Instruments) w znieczuleniu ogólnym
• metody biotechniki rozrodu u owiec: synchronizacja owulacji owiec (gąbki dopochwowe) i przyspieszanie sezonu rozrodczego (implanty melatoniny) do celów doświadczalnych
• laparotomia pośrodkowa świń i owiec: owariektomia, histerektomia, wywoływanie ischemii macicy przez zamknięcie tętnicy macicznej świni, przyżyciowe pobieranie skrawków macicy, implantowanie kaniul do naczyń krwionośnych krezki macicy świni w celu wielogodzinnego pobierania krwi i/lub infuzji substancji biologicznie aktywnych (np. hormonów) w znieczuleniu ogólnym
• implantowanie kaniul do naczyń krwionośnych głowy i szyi u świni, owcy, królika w znieczuleniu ogólnym
• długotrwałe (12-godzinne) pobieranie płynu mózgowo-rdzeniowego z III komory mózgu u owiec
• długotrwałe pobieranie krwi z żyły szyjnej zewnętrznej u świń i owiec
• ciągłe monitorowanie saturacji krwi tlenem oraz nasycenie wydychanego powietrza dwutlenkiem węgla przy zastosowaniu pulsoksymetru z detektorem CO₂ (Nonin Medical Inc.9847V) w znieczuleniu ogólnym

2. Metody ex vivo

• badania aktywności skurczowej żył powierzchownych głowy świni (żyły czołowa, nosowa, twarzowa)
• badania aktywności skurczowej izolowanych tętnic układu rozrodczego samicy świni (tętnica maciczna)
• badania na izolowanej głowie świni, owcy, królika perfundowanej autologiczną krwią
• badania na izolowanym jajniku, macicy (świni), jadrze (świnia, szczur) perfundowanych autologiczną krwią

3. Inkubacje tkankowe

• skrawki podwzgórza świni

4. Metody analitycze

4.1 Metody biologii molekularnej

Ekspresja na poziomie mRNA metodą Real Time PCR (qPCR) lub Real Time PCR z zastosowaniem sondy (qPCR TaqMan) oraz białka metodą western-blot (WB):

• czynniki związane z produkcją płynu mózgowo-rdzeniowego: VEGF, jego receptory Flt-1, Flk-1 i koreceptor NRP-1, akwaporyna-1,  akwaporyna-4, klaudyna-2 (qPCR, WB) w splocie naczyniówkowym komór mózgu u owiec
• białka połączeń zamykających limitujących przechodzenie substancji na drodze międzykomórkowej: białka błonowe okludyna, klaudyna-1 i JAM-1 oraz białka cytozolowe ZO-1, ZO-2, ZO-3 i afadyna-6 (qPCR, WB) w splocie naczyniówkowym komór mózgu u owiec
• białka transporterowe: transtyretyna (TTR) w splocie naczyniówkowym komór mózgu u owiec (qPCR)
• kompleks receptora lipopolisacharydu (LPS): receptor toll-podobny 4 (TLR4), CD14 i  MD-2 (qPCR) w splocie naczyniówkowym komór mózgu u owiec
• cytokiny i ich receptory oraz chemokiny: TNFα, IL-1β, IL-6, TNFRI, TNFRII, IL-1R1, IL-1R2, IL-6R, gp130, MCP-1 (qPCR) w splocie naczyniówkowym komór mózgu u owiec
• metaloproteinazy i ich inhibitory: MMP2, MMP3, MMP9, TIMP-1 i TIMP-3 (qPCR) w splocie naczyniówkowym komór u owiec
• marker hipoksji HIF-1α w macicy świni (qPCR, WB)
• białka zegara biologicznego w podwzgórzu świni domowej: BMAL 1, CLOCK, NPAS2, PER 1-3, CRY 1-2 (qPCR TaqMan, WB)
• receptory jądrowe powiązane z funkcjonowaniem molekularnego zegara biologicznego w podwzgórzu świni domowej: REV-ERB α, REV-ERB β, ROR α, ROR β, ROR γ – (qPCR TaqMan)
• enzymy antyoksydacyjne w jądrach i najądrzach samca sarny oraz żubra: EcSOD, GpX 4 i GpX 5 (qPCR), SOD-1, Cat (qPCR, WB) oraz SOD-1, SOD-2 w macicy świni (qPCR)
• receptor leptyny (Ob-Ra i Ob-Rb) w splocie naczyniówkowych komór mózgu oraz w podwzgórzu świni domowej (qPCR, WB)

4.2 Immunoenzymatyczne oznaczanie stężeń w osoczu (ELISA):

• LPS Binding Protein u owiec
• IL-6 u owiec

4.3 Immunoizotopowe oznaczanie stężeń (RIA) w osoczu, tkankach, płynach ustrojowych:

• hormonów tarczycy: T3 i T4 (wolne i całkowite)
• melatonina
• hormonów związanych z funkcjonowaniem układu rozrodczego: estradiol, estron, progesteron, testosteron, oksytocyna, prostaglandyna F2α świni
• hormonów białkowych: prolaktyna (PRL), luteotropina (LH), folikulotropina (FSH), aktywina A i leptyna świni

4.4.Radioizotopowe znakowanie hormonów

• Jodowanie (J¹²⁵) oksytocyny, GnRH, FSH, LH, prolaktyny, β-endorfiny

4.5 Immunohistochemiczna lokalizacja (z zastosowaniem fluorochromów):

• białka c-Fos, produktu genu wczesnej odpowiedzi komórkowej, w strukturach mózgu świni
• NADPH-diaforazy (metodą histochemiczną) w naczyniach krwionośnych mózgu świni
• syntaz tlenku azotu iNOS, eNOS w macicy oraz okołojajnikowym kompleksie naczyniowym świni, w jelicie grubym szczura
• endogennego markera hipoksji HIF-1α w macicy i jajowodach świni
• enzymów antyoksydacyjnych SOD-1, SOD-2 w narządach układu rozrodczego samicy świni, jelicie grubym myszy
• czynnika wzrostu śródbłonka naczyń VEGF oraz jego receptorów Flt-1, Flk-1 w splocie naczyniówkowym komór mózgu owcy białka antyapoptotycznego cFLIP w narządach układu rozrodczego samicy świni
• komórek apoptotycznych metodą TUNEL (Terminal Transferase dUTP Nick End Labeling) w macicy świni, jelicie grubym szczura
• enzymu hydroksylazy dopaminowej (DβH) w naczyniach krwionośnych głowy (żyła twarzowa, nosowa, czołowa) oraz okołojajnikowego kompleksu naczyniowego świni
•  receptora leptyny w splocie naczyniówkowym mózgu oraz w podwzgórzu świni
• receptora TLR4 (toll-like receptor) oraz CD14 w splocie naczyniówkowym komór mózgu owcy

4.6 Analiza gęstości optycznej wyrażonej w jednostkach densytometrycznych

• pomiary intensywności reakcji barwnej obserwowanej w mikroskopie z zastosowaniem programu Axio Vision Rel. 4.8.2

Wykaz aparatury

1. Urządzenia stosowane w doświadczeniach in vivo, ex vivo:

• Aparat do narkozy wziewnej dla dużych zwierząt (KOMESAROFF MINI-KOM)
• Kardiomonitor (TEMED)
• Pulsoksymetr z detektorem CO2 (Nonin Medical Inc. 9847V)
• Zestaw do badań na izolowanych narządach (UNIPER, UP-100; Hugo Sachs Elektronik-Harvard)
• Zestaw do badań na izolowanych naczyniach i mięśniówce gładkiej (HSE F30, type 372; Hugo Sachs Elektronik)
• Pompy infuzyjne
• Pompy perystaltyczne (Elphan, ZALIMP)
• Urządzenie do pomiaru przepływu krwi z transducerami (Narcomatic)
• Wiertarka chirurgiczna (Eskulap)

2.    Sprzęt laboratoryjny stosowany w analizie western blot:

• Aparat do elektroforezy białek-pionowa (BIO-RAD PowerPac, Invitrogen)
• Aparat do mokrego transferu (BIO-RAD PowerPac)
• Mieszadło hematologiczne (Chemland)

3.    Sprzęt laboratoryjny stosowany w analizie kwasów nukleinowych:

• Komora z przepływem laminarnym (Polon)
• Aparat do elektroforezy kwasów nukleinowych-horyzontalna (BIO-RAD PowerPac)

4.    Sprzęt laboratoryjny stosowany w analizach RIA:

• Licznik do pomiaru promieniowania gamma (LKB)
• Licznik do pomiaru promieniowania beta (Beckman)
• Radiometr Rust-3 z sondą

5.    Podstawowy sprzęt laboratoryjny:

• Aparat próżniowy BioVac 225 (OmegaLab)
• Spektrofotometr (Beckman)
• Mikroskop stereoskopowy
• Mikroskop MBL 180T
• Termoblok (OmegaLab)
• Worteksy (Biosan)
• Wytrząsarki (Biosan)
• Wytrząsarka z komorą inkubacyjną (Edmund Bűhler)
• Mieszadła magnetyczne (Biosan, IKA WERKE)
• Łaźnia wodna z przykrywką (Pracowania elektroniki i aparatury elektronicznej)
• pH-metr stacjonarny (HANNA instruments)
• Wirówki (Biosan, StarLab)
• Wirówka z chłodzeniem (Beckam,MPW Med. Instruments)
• Wagi elektroniczna (RADWAG, MEDICAT LTD)
• Ultrazamrażarka (SANYO)
• Wyciąg chemiczny (Polon)
• Wytwornica lodu (Scotsman)
• Aparat Hamilton Microlab 1000

Czytaj więcej

Przygotowanie materiału do badań:

• Izolacja komórek: ciałka żółtego, myometrium, endometrium, nabłonka jajowodu
• Hodowle komórek i skrawków: inkubator (Memmert, Niemcy)

Metody analityczne i pomiarowe:

• Ocena przeżywalności komórek (test cytotoksyczności): czytnik ELISA (Multiscan EX, Labsystems, Finlandia)
• Enzymoimmunologiczne oznaczanie hormonów steroidowych, białkowych i prostaglandyn (czytnik ELISA, Multiscan EX,Labsystems)
• Klasyczna technika PCR i jej modyfikacje: RT-PCR, nested-PCR, touchdown PCR (system dokumentacji żeli MiniBIS Pro)
• Pomiar zmian ekspresji genów metodą RT PCR i Real-time PCR:
• izolacja RNA, (spektrofotometr BioPhotometr, Eppendorf, oraz spektrofotometr Nonodrop)
  • odwrotna transkrypcja, PCR (termocykler MJ Mini BioRad)
  • system detekcji dla Real-time PCR (APB Prism 7300 Applied Biosystems, USA)
  • system do analizy obrazu MiniBIS Pro (DNR Bio Imaging System, Israel)
• 5’ i 3’ RACE PCR – szybka amplifikacja końców cDNA
• Pomiar ilości białka metodą Western Blot: Mini PROTEAN 3 System (system dokumentacji żeli MiniBIS Pro).
• Pomiar mobilizacji wewnątrzkomórkowych jonów Ca2+ z wykorzystaniem barwnika fluorescencyjnego Fura 2 (mikroskop Nikon Eclipse TS 100 z oprogramowaniem do analizy NIS-Elements Basic Research),
• Immunohistochemia (kriostat, analiza obrazu – mikroskop Imager Z1-Zeiss z oprogramowaniem Axio Vision 4.8).
• Pomiar aktywności motorycznej (kurczliwości) skrawków myometrium i jajowodu: tensometr (Hugo Sachs Elektronik, Niemcy – urządzenie na stanie ZLRF)
• Oznaczanie katecholamin metodą HPLC z detekcją elektrochemiczną (Hewlett-Packard, Series 1050)

Czytaj więcej

Metody badawcze

1. Oznaczanie zawartości hormonów i prostaglandyn metodą RIA i EIA;
2. Izolacja i hodowla:
   • komórek błony śluzowej macicy świni,
   • komórek błony mięśniowej macicy,
   • komórek śródbłonka naczyń,
   • komórek nabłonkowych jajowodu,
   • komórek lutealnych,
   • komórek granulozy,
   • komórek trofoblastu,
   • komórek przysadki,
3. Pozyskiwanie, hodowla in vitro, kriokonserwacja oraz transfer niechirurgiczny zarodków świni;
4. Barwienia i analiza histologiczna tkanek i narządów układu rozrodczego;
5. Barwienia immunohistochemiczne i immunofluorescencyjne;
6. Skaningowa i transmisyjna mikroskopia elektronowa;
7. Analiza Western blot;
8. Izolacja i oczyszczanie kwasów nukleinowych;
9. Analiza jakościowa i ilościowa DNA i RNA;
10. Badanie ekspresji genów metodą real-time PCR;
11. Analiza Southern blot;
12. Transfekcje komórek wektorami plazmidowymi.

Czytaj więcej

Metody badawcze

1. Metody in vivo:
   • metody biotechniki rozrodu świń i krów: synchronizacja rui, superowulacja, inseminacja;
   • ultrasonograficzna (USG) diagnostyka narządów rodnych świni, krowy i klaczy;
   • laparotomia świń i krów: kaniulacja naczyń krwionośnych układu rodnego; mikrodializa ciałek żółtych i innych struktur narządu rodnego;
   • przyżyciowe pozyskiwania jajników i ciałek żółtych krów (poprzez laparotomię lub kolpotomię);
   • biopsje błony śluzowej macicy krowy i klaczy.
2. Metody in vitro:

   Izolacja enzymatyczna i hodowle komórkowe:

   • komórki nabłonka i tkanki łącznej błony śluzowej macicy świni, krowy, klaczy i kotki,
   • komórki steroidogenne ciałka żółtego krowy, klaczy i kotki,
   • komórki warstwy ziarnistej pęcherzyka jajnikowego krowy,
   • komórki śródbłonka naczyń  krwionośnych ciałka żółtego i błony śluzowej macicy krowy, klaczy i kotki,
   • komórki nabłonkowe zatoki mlekonośnej wymienia krowy,
   • hodowla komórek adherentnych i zawiesinowych,
   • transfekcja komórek.

   Inkubacje tkankowe:

   • skrawki błony śluzowej macicy świni, krowy, klaczy i kotki,
   • skrawki ciałka żółtego świni, krowy i klaczy,
   • skrawki zatoki mlekonośnej wymienia krowy.

   Metody wirusologiczne:

   • izolacja, koncentracja i przygotowanie stocków wirusa,
   • test infekcyjności (określanie współczynnika zakażenia – MOI – multiplicity of infection).
3. Metody analityczne

   3.1  Metody biologii molekularnej:

   • ekspresja czynników pro- i antyapaptotycznych ( TNFα, IFNγ, IL-1α, Il-6, FasL, BCL2, BAX, Caspase3, Caspase8) i ich receptorów,
   • ekspresja enzymów szlaku steroidogenezy (3β-HSD, StAR, CYP450),
   • ekspresja enzymów szlaku metabolizmu kwasu arachidonowego:
     • szlak powstawania leukotrienów (5-LOX) i ich receptorów
     • szlak powstawania prostaglandyn (PTGS-2, PGES, PGFS, 9KPGR, AKR1B5)
   • ekspresja enzymów związanych z syntezą kwasu lizofosfatydowego (PLD i PLA2) i jego receptorów (LPA1, LPA2, LPA3, LPA4),
   • ekspresja oksytocyny i  jej receptora,
   • ekspresja czynnika wzrostu nerwów i jego receptorów (TrkA, p75) na poziomie mRNA metodą RT Real Time PCR i semiquantitative RT PCR oraz białka metodą Western-blot,
   • klonowanie/PCR (np. genów wirusowych),
   • Western blot (np. badanie ekspresji wirusowych białek litycznych i latentnych),
   • Southern blot,
   • electromobility shift assay (EMSA) –np. wiązanie się białka wirusa do sekwencji pochodzących z genomu wirusa.

   3.2  Immunoizotopowe oznaczanie (RIA) stężeń:

   • hormonów białkowych (LH, PRL) i receptorów LH/hCG z użyciem preparatów znakowanych jodem (J-125),
   • hormonów steroidowych (P₄, A₄, T, E₁, E₂, kortyzol), prostaglandyn oraz metabolitu PGF2α – PGFM z użyciem hormonów znakowanych trytem (H3) oraz wykonywanie jodowań hormonów białkowych (LH, PRL) i cytokin (IL-1β, IL-6, TNF-α),

   3.3  Immunoenzymatyczne oznaczanie stężeń (ELISA):

   • hormonów białkowych (LH),
   • hormonów steroidowych (P4, T4, E2, kortyzol),
   • prostaglandyn (PGE2, PGF2α) oraz metabolitu PGF2α – PGFM,
   • oksytocyny i endoteliny przy zastosowaniu hormonów znakowanych peroksydazą chrzanową (HRP) lub biotyną,

   3.4  Immunocytochemiczna lokalizacja:

   • enzymów szlaku przemian kwasu arachidonowego w jajniku, macicy oraz komórkach nabłonkowych zatok mlekonośnych (PTGS-2, PGES, PGFS, AKR1B5, 5-LO),
   • cytokin w jajniku i macicy (TNF-α, IL-1α, IL-1β i innych),
   • enzymów szlaku przemian cholesterolu w jajniku (P450scc, 3β-HSD, aromatazy) oraz komórkach nabłonkowych zatok mlekonośnych (11β-HSD, 3β-HSD),
   • receptorów (TNFR I, TNFR II, IL-1αR, IL-1 βR, LTRI, LTRII, GC-R, LPAR-1, LPAR-2, LPAR-3, LPAR-4, LPAR4, OTR, TrkA, p75),
   • neuroprzekaźników i ich markerów (NPY, VIP, SOM, SP, GAL, CGRP, PACAP, DβH, VACHT, nNOS),
   • fluorescence in situ hybridization (FISH) – wykrywanie genomu wirusa w komórce,
   • znakowanie immunofluorescencyjne (IFA) białek wirusowych w komórce, również w połączeniu z rozprowadzaniem metafaz,
   • fluorescence activated cell sorting (FACS) analysis – analiza cyklu komórkowego.

   3.5  Analiza parametrów krytycznych i gazometrii krwi:

   Analiza parametrów gazometrii, elektrolitów i oksymetrii przy zastosowaniu analizatora parametrów krytycznych RAPIDpoint 405 (SIEMENS).

   3.6  Morfometryczna analiza krwi:

   Podstawowe i rozszerzone badania morfologiczne krwi bydła, kozy, owcy, konia, świni, kota, psa, królika, świnki morskiej, szczura oraz myszy, przy zastosowaniu analizatora hematologicznego ADVIA 2120i (SIEMENS).

   3.7  Immunochemiczna–chemiluminescencyjna analiza krwi:

   Oznaczanie hormonów steroidowych (P4, T, E2, kortyzol) oraz markerów stanu zapalnego (Il-1β, TNF-α, IL-10, LBP), przy zastosowaniu analizatora immunochemicznego IMMULITE®1000 (SIEMENS).

   3.8  Metody proteomiczne: 2D, 2D-DIGE i MALDI-TOF/TOF w celu określenia:

   • enzymów szlaku przemian kwasu arachidonowego w jajniku, macicy oraz komórkach nabłonkowych zatok mlekonośnych (PTGS-2, PGES, PGFS, AKR1B5, 5-LO),
   • białek, które mogą być odpowiedzialne za wczesną zamieralność zarodków u świń,
   • enzymów szlaku przemian cholesterolu w jajniku (P450scc, 3β-HSD, aromatazy) oraz komórkach nabłonkowych zatok mlekonośnych (11β-HSD, 3β-HSD),
   • białek związanych z formowaniem, funkcjonowaniem oraz regresją ciałka żółtego.

   3.9  Koimmunoprecypitacja

   • Określenie związków wiążących 17-β-estradiol.

Wykaz aparatury

1. Dwa stanowiska robocze do izolacji i hodowli komórek:
   • Komora z przepływem laminarnym Thermo Scientific MSC-ADVANTAGE (180)
   • Komory z przepływem laminarnym Thermo Scientific MSC-ADVANTAGE (120) – 2 szt.
   • Komora Esico Class II BSC
   • Inkubator CO₂ ThermoForma
   • Inkubator CO₂ Sanyo
   • Inkubator Memmert IMCO2-153
   • Wirówka MPW 350R 2 szt.
   • Wirówka MPW 223E
   • Pompa perystaltyczna VederFlex Scientific
   • Mikroskop odwrócony standardowy Olympus CKX41 – 2 szt.
   • Mikroskop Olympus CX31RBSF-2
   • Inkubatory z wytrząsaniem EB TH15(Edmund Bühler) – 2 szt.
   • Łaźnia wodna z wytrząsaniem Julabo SW23
   • Łaźnia wodna Major Science SWB-10L-1
   • Myjka ultradźwiękowa do pipet Sonorex
   • Autoklaw Sanyo – 2 szt.
   • Wirówka Eppendorf 5804R
   • Cieplarka Sanyo MOV-112F
   • Suszarka-sterylizator Binder E28
   • Suszarka-sterylizator Terma
   • Zmywarka Smeg GW1060C
2. Stanowisko robocze do izolacji kwasów nukleinowych:
   • Komora z przepływem laminarnym Holten (90)
   • Wirówka laboratoryjna Hettich Universal 32R
   • Wirówka laboratoryjna Eppendorf miniSpin
   • Aparat do elektroforezy agarozowej BIO-RAD PowerPac
   • UV Transilluminator WEALTEC
   • Termocykler BIO-RAD MJ Mini
   • Homogenizator ultradźwiękowy UP50H
   • Homogenizator TissueRuptor Qiagen
   • Wirówka lab Waeltec E-Centrifuge
   • Łaźnia wodna z wytrząsaniem Major Science MW-WB
   • Vortex BioRad Sproud
   • Vortex Mixer LabNet
3. Stanowisko robocze do Western blot:
   • Aparat do elektroforezy poliakryloamidowej BIO-RAD PowerPac
   • Aparat do mokrego transferu BIO-RAD PowerPac
   • Aparat do półsuchego transferu TE70PWR Amersham Biosciences
   • System detekcji białek SNAP i.d. Millipore
   • RollMixer Chemland
4. Zintegrowana Pracownia Immunodiagnostyki

   Zespół wspólnie z Zespółem Immunologii i Mikrobiologii Żywności zorganizował Zintegrowaną Pracownię Immunodiagnostyki. Ze strony ZIPR w skład Zintegrowanej Pracowni Immunodiagnostyki wchodzi:

   4.1. Stanowisko robocze do immunoenzymatycznej analizy stężeń hormonów (ELISA);

   4.2. Stanowisko robocze do immunoizotopowej analizy stężeń hormonów (RIA);

   4.3. Stanowisko robocze do morfometrycznej analizy krwi;

   4.4. Stanowisko robocze do immunochemicznej analizy krwi;

   4.5. Stanowisko robocze do analizy parametrów krytycznych i gazometrii krwi;

5. Pracownia Mikrobiologii i Wirusologii Molekularnej

   5.1 Stanowisko robocze do pracy z kulturami in vitro oraz GMM klasy II;

   5.2 Stanowisko robocze do izolacji fibroblastów z tkanek ludzkich;

   5.3 Stanowisko robocze do analizy ekspresji białek (SDS PAGE + Western blot);

   5.4 Stanowisko robocze do hodowli bakterii na podłożach płynnych i stałych oraz kokultur bakterii z tkankami.

Czytaj więcej

Wykaz aparatury:

1. Aparat do pomiarów elektrochemicznych  AUTOLAB, Eco Chemie, The Netherlands;
2. Potencjometr: Labs, Inc. EMF16 Precision Electrochemistry EMF Interface, Lawson, USA;
3. Piezoelektryczna kwarcowa mikrowaga (QCM) 410 CH Instruments, USA;
4. Aparat do pomiaru kąta zwilżalności OCA 15 – for DataPhysic, Germany;
5. Aparat do pomiaru powierzchniowego rezonansu  plazmonów (SPR) AUTOLAB, Eco Chemie, The Netherlands;
6. Spektrofotometr NANODROP 2000, Thermo Scientific, US.

Techniki pomiarowe:

• woltamperometria cykliczna,
• woltamperometria fali prostokątnej,
• woltamperometria pulsowa różnicowa,
• elektrochemiczna spektroskopia impedancyjna,
• mikrowaga kwarcowa,
• pomiar kąta zwilżania,
• powierzchniowy rezonans plazmonowy.

Czytaj więcej

2026

1. Adamek, Mikołaj; Majewska, Anna ; Zawisza, Maria; Teitge, Felix; Jung-Schroers, Verena; Piackova, Veronika; Gela, David; Kocour, Martin; Chadzińska, Magdalena; Falco, Alberto; Korytář, Tomáš; Ciereszko, Andrzej ; Steinhagen, Dieter; Rakus, Krzysztof; Dietrich, Mariola A. . Proteomic profiling of gills during carp edema virus infection provides insights into immune responses and cellular stress associated with koi sleepy disease. Fish & Shellfish Immunology 2026, 171: art. no 111194 (1-14) (10.1016/j.fsi.2026.111194).
2. Amaral, Ana; Cerveira-Pinto, Marta; Santos, Carina; Kordowitzki, Pawel; Skarżyński, Dariusz ; Ferreira-Dias, Graça; Szóstek-Mioduchowska, Anna . TGF-β1 and estradiol modulate prostaglandin concentrations and related gene expression in equine endometrium during the follicular phase. Veterinary Journal 2026, 316: art. no 106594 (1-10) (10.1016/j.tvjl.2026.106594).
3. Amarowicz, Ryszard . Importance of condensed tannins in food technology. Journal of Food Safety and Food Quality 2026, 779(1): art no. 47882 (1-2) (10.31083/JFSFQ47882).
4. Brzyszcz, Agnieszka ; Sarosiek, Beata ; Dryl, Katarzyna ; Targońska, Katarzyna; Blitek, Michał; Kucharczyk, Dariusz; Skorupa, Wojciech; Morita, Masaya; Kowalski, Radosław K. . Effect of oxygen and antioxidants on the common carp (Cyprinus carpio L.) milt during short-term storage. Aquaculture 2026, 612(Part 1): art. no 743172 (1-11) (10.1016/j.aquaculture.2025.743172).
5. Buderatska, Nataliia; Gontar, Juliia; Yurchuk, Arsenii; Ilyin, Ihor; Petrushko, Maryna; Yurchuk, Taisiia . MOL classification: a novel meiotic spindle scoring system for predicting human embryo development and ploidy. Journal of Assisted Reproduction and Genetics 2026, 43: 229-243 (10.1007/s10815-025-03710-3).
6. Cholewińska, Ewelina; Juśkiewicz, Jerzy ; Fotschki, Bartosz ; Ognik, Katarzyna. Manganese deficiency and Mn2O3 nanoparticles supplementation disrupt bone remodeling and mineral matrix maturation in rats. International Journal of Molecular Sciences 2026, 27(1): art. no 153 (1-18) (10.3390/ijms27010153).
7. Cichowska-Likszo, Aleksandra W.; Likszo, Paweł ; Fraser, Leyland; Mlynarz, Piotr; Mogielnicka-Brzozowska, Marzena. ALB, GPX5 and PTGDS as potential biomarkers for the aging processes of the dog epididymis. Reproduction, Fertility and Development 2026, 38(1): art. no RD25105 (1-13) (10.1071/RD25105).
8. Ciesielski, Slawomir; Babis, Wiktor; Żarski, Daniel ; Gomułka, Piotr; Hliwa, Piotr. Does the manipulation of light conditions affect the gut microbiome of Eurasian perch (Perca fluviatilis L.) in a recirculating aquaculture system?. Journal of Fish Biology 2026, przyjęta do druku (10.1111/jfb.70373).
9. Cieśla, Wiktoria; Adamek-Urbańska, Dobrochna; Kasprzak, Robert; Gomułka, Piotr; Wójcik, Maciej; Bochenek, Joanna; Bober, Helena; Kawalski, Kacper; Martynow, Jakub; Szczepański, Adrian; Szudrowicz, Hubert; Woźniak, Małgorzata; Śliwiński, Jerzy; Palińska-Żarska, Katarzyna; Żarski, Daniel ; Krejszeff, Sławomir; Król, Jarosław; Kamaszewski, Maciej. Hemp meal (Cannabis sativa) as an alternative dietary protein source for European perch (Perca fluviatilis). Animals 2026, 16(4): art. no 649 (1-17) (10.3390/ani16040649).
10. Danowska, Magdalena ; Nikołajuk, Agnieszka ; Strączkowski, Marek . Skeletal muscle expression of the genes associated with glycoprotein 130 signaling in relation to obesity and insulin sensitivity. Journal of Endocrinological Investigation 2026, przyjęta do druku (10.1007/s40618-025-02781-4).
11. Debernardis, Rossella ; Palińska-Żarska, Katarzyna; Wałdowska, Sylwia ; Panda, Abhipsa ; Rocha de Almeida, Taina; Klopp, Christophe; Żarski, Daniel . Heart oedema in freshly hatched larvae of Eurasian perch is associated with multi-tissue gene dysregulation. Genomics 2026, 118: art. no 111183 (1-11) (10.1016/j.ygeno.2025.111183).
12. Drabińska-Fois, Natalia ; Majcher, Anna; Jagielski, Paweł; Borowicz-Skoneczny, Sebastian; Romaszko, Jerzy. Alteration in amino acid metabolism after isocaloric, energy-restricted ketogenic diet in women with overweight and obesity: randomized KETO-MINOX trial. Nutrients 2026, 18(2): art. no 300 (1-14) (10.3390/nu18020300).
13. Drabińska-Fois, Natalia ; Ogrodowczyk, Anna M. ; Bauer, Witold; Topolska, Joanna ; Bączek, Natalia ; Stenbäck, Ville; Herzig, Karl-Heinz; Borowicz-Skoneczny, Sebastian; Romaszko, Jerzy. Immune-modulating effects of energy-restricted ketogenic diet in women with overweight and obesity: KETO-MINOX study. European Journal of Nutrition 2026, 65: art. no 83 (1-15) (10.1007/s00394-026-03935-7).
14. Fotschki, Bartosz ; Napiórkowska, Dorota; Fotschki, Joanna ; Myszczyński, Kamil ; Cholewińska, Ewelina; Ognik, Katarzyna; Juśkiewicz, Jerzy . Dietary fibre modulates gut microbiota responses to copper nanoparticles. Nutrients 2026, 18(5): art. no 828 (1-23) (10.3390/nu18050828).
15. Gunasekara, Saumya; Reshi, Qurat Ul Ain; Midekessa, Getnet; Kodithuwakku, Suranga; Fazeli, Alireza; Andronowska, Aneta . The impact of extracellular vesicles on spermatozoa: Navigating toward fertilization. Reproductive Biology 2026, 26: art. no 101090 (1-11) (10.1016/j.repbio.2025.101090).
16. Hyseni, Bahtir; Papadimitriou, Konstantinos; Issa, Aline; Ergün, Burcu Gündüz; Gonzalez-Domenech, Carmen M.; Arranz,Elena; Pula, Endra Luzha; Erem, Erenay; Garcia-Gutierrez, Enriqueta; Bouchaud, Gregory; Szajewska, Hania; Yıldırım, Hatice Kalkan; Künili, İbrahim Ender; Markiewicz, Lidia ; Perry, Mario Caruana Grech; Kilic-Akyilmaz, Meral; Halim El Jali, Mounaim; Merabti, Ryma; Mojsova, Sandra; Karagül Yüceer, Yonca; Gulsunoglu-Konuskan, Zehra; Akpınar, Aslı; Karakaş-Budak, Barçın; Chassard, Christophe; Pracer, Smilja; Vergères, Guy; Bavaro, Simona L. The role of fermented foods in managing food allergies in children and adults: a systematic review. Frontiers in Nutrition 2026, 12: art. no 1689636 (1-19) (10.3389/fnut.2025.1689636).
17. Jana, Barbara ; Mówińska, Aleksandra ; Andronowska, Aneta ; Całka, Jarosław. Role of noradrenaline and adrenoreceptors in prostaglandin E2 generation in Escherichia coli lipopolysaccharide-treated porcine endometrial epithelial cells. Annals of Animal Science 2026, przyjęta do druku (10.2478/aoas-2025-0115).
18. Kononiuk, Anna D. ; Kęska, Paulina; Korzekwa, Anna J. . Improvement of colour and oxidative stability of red deer and beef meat under sonication treatment. Scientific Reports 2026, 16: art. no 1180 (1-14) (10.1038/s41598-025-30764-1).
19. Lonc,Grzegorz; Hrabia, Anna; Ptak, Anna; Boztepe, Ummu Gulsum; Frydrych, Karolina; Korzekwa, Anna J. ; Gil, Dorota; Zarzycka, Marta; Kotula-Balak, Małgorzata. The possible meaning of tissue remodeling in the adrenal gland of the Eurasian beaver (Castor fiber L.) – in vivo and in vitro chloroquine studies. Endocrine and Metabolic Science 2026, 20: art. no 100293 (1-12) (10.1016/j.endmts.2026.100293).
20. Midekessa, Getnet; Godakumara, Kasun; Hasan, Mohammad Mehedi; Andronowska, Aneta ; Fazeli, Alireza. Detection of Organelle-Specific Dyes Labeled Extracellular Vesicles with Colocalization-Fluorescence Nanoparticle Tracking Analysis. ACS Omega 2026, 11: 10530-10544 (10.1021/acsomega.5c12069).
21. Mogielnicka-Brzozowska, Marzena; Cichowska-Likszo, Aleksandra Wiktoria; Likszo, Paweł ; Fraser, Leyland; Popielarczyk, Weronika; Pieklik, Julia; Kamińska, Maja; Luvoni, Gaia Cecilia. Potential Proteins Associated with Canine Epididymal Sperm Motility. Cells 2026, 15(1): art. no 85 (1-23) (10.3390/cells15010085).
22. Mousavi, Seyed Omid Reza; Ul Ain Reshi, Qurat; Godakumara, Kasun; Muhandiram, Subhashini; Midekessa, Getnet; Midekessa, Getnet; Andronowska, Aneta ; Kopanchuk, Sergei; Lavogina, Darja; Rinken, Ago; Kodithuwakku, Suranga; Fazeli, Alireza. Milk-derived extracellular vesicles protect bovine oviduct epithelial cells from oxidative stress. Cells 2026, 15(1): art. no 18 (1-25) (10.3390/cells15010018).
23. Moza Jalali, Beenu ; Wasielak-Politowska, Marta. From Zygote to Blastocyst—Molecular Aspects of Porcine Early Embryonic Development. Cells 2026, 15(1): art. no 15 (1-26) (10.3390/cells15010015).
24. Norton, Victoria; Lignou, Stella; Magno Malagon, Angela; Fotschki, Joanna ; Kopcewicz, Marta ; Kieda, Iwona; Vásquez, Geraldine; Sfyra, Konstantina; Alexi, Niki. RECYCLE-REUSE-REDUCE: Developing sustainable food packaging toolkits for school-aged children in Poland and Spain – A pilot study. Societal Impacts 2026, 7: art. no 100162 (1-4) (10.1016/j.socimp.2025.100162).
25. Nynca, Anna; Swigonska, Sylwia; Molcan, Tomasz ; Petroff, Brian K; Ciereszko, Renata E. Molecular Actions of Cyclophosphamide (CPA) in the Ovaries of Rats with Mammary Neoplasia. Cancer Management and Research 2026, 18: 1-18 (10.2147/CMAR.S557751).
26. Nynca, Joanna ; Palińska-Żarska, Katarzyna; Wałdowska, Sylwia ; Król, Jarosław; Żarski, Daniel . Cortical reaction and lipid droplet fragmentation as dual predictors of egg quality in pikeperch (Sander lucioperca). Aquaculture 2026, 612(Part 2): art. no 743243 (1-6) (10.1016/j.aquaculture.2025.743243).
27. Nynca, Joanna ; Rocha de Almeida, Tainá; Klopp, Christophe; Palińska-Żarska, Katarzyna; Król, Jarosław; Ljubobratović, Uroš; Bobe, Julien; Żarski, Daniel . Understanding the molecular implications of in vivo ageing in pikeperch eggs via transcriptomic profiling. Theriogenology 2026, 252: art. no 117759 (1-8) (10.1016/j.theriogenology.2025.117759).
28. Ogrodowczyk, Anna M. ; Kowalska, Karolina; Kulasik, Dominik. Milk lipids as bioactive modulators of the bacterial proteome: mechanisms linking dairy management to microbial performance. Animals 2026, 16(3): art. no 477 (1-36) (10.3390/ani16030477).
29. Panda, Abhipsa ; Wałdowska, Sylwia ; Debernardis, Rossella ; Nynca, Joanna ; Majewska, Anna M. ; Żarski, Daniel . Post-thaw storage of sperm as a tool towards revealing paternal-effect-associated genes in Eurasian perch, Perca fluviatilis. BMC Genomics 2026, przyjęta do druku (10.1186/s12864-026-12648-4).
30. Pinto-Bravo, Pedro; Rebordão, Maria Rosa; Amaral, Ana S.; Szóstek-Mioduchowska, Anna ; Fernandes, Carina; Galvão, António M. ; Silva, Elisabete; Alpoim-Moreira, Joana; da Costa, Rosário P. Roberto; Skarżyński, Dariusz J. ; Ferreira-Dias, Graça M. Equine oviduct-specific glycoprotein is modulated by hormones and sperm cells. Research in Veterinary Science 2026, 199: art. no 106022 (1-8) (10.1016/j.rvsc.2025.106022).
31. Pratumvinit, Busadee; De Biasi, Julien ; Boonyasit, Yuwadee; Sutiwisesak, Rujapope; Chitta, Pitaksin; Korsirikoon, Chawin; Dawangpa, Atchara; Khamrangsee, Saliltip; Kaewboonruang, Witchayaporn; Sae-Lee, Chanachai. Roles of folate, vitamin B12 and vitamin D in older individuals with frailty. Nutrition Research Reviews 2026, 39: art. no e1 (1-15) (10.1017/S0954422425100218).
32. Raczyk, Marianna ; Carlberg, Carsten . From Sunlight to Signaling: Evolutionary Integration of Vitamin D and Sterol Metabolism. Metabolites 2026, 16(1): art. no 17 (1-15) (10.3390/metabo16010074).
33. Ratajczak-Wrona, Wioletta; Aniszewska, Aleksandra; Iwaniuk, Agnieszka; Garley, Marzena; Wołczyński, Sławomir ; Skarżyński, Dariusz Jan ; Wrobel, Jolanta; Zebrowska, Agnieszka; Radziwon, Piotr; Pucelik, Barbara; Jabłońska, Ewa. “Protective” Imazalil vs Its Negative Effects on Immune System Cells—Neutrophils. Life-Basel 2026, 16(2): art. no 365 (1-15) (10.3390/life16020365).
34. Rybiński, Maciej ; Ghosh Dastidar, Ranjini ; Zawrotna, Natalia; Gospodarska, Emilia ; Carlberg, Carsten . Chromatin and transcriptional dynamics underlying the immune-modulatory effects of vitamin D3 in vivo. Scientific Reports 2026, 16: art. no 2997 (1-15 (10.1038/s41598-025-32831-z).
35. Sadowska, Agnieszka ; Wójtowicz, Anna ; Molcan, Tomasz ; Drzewiecka, Ewa M. ; Kaczmarek, Monika M. ; Słyszewska, Magda ; Ferreira-Dias, Graça; Szóstek-Mioduchowska, Anna Z. . Interleukin 17A in the fibrotic-related processes in endometrosis in the mare. Theriogenology 2026, 249: art. no 117680 (1-13) (10.1016/j.theriogenology.2025.117680).
36. Serej, Oliwia ; Kowalik, Magdalena K. ; Rękawiecki, Robert . DNA methylation in the ovary and uterus of mammalian animal models: implications for reproductive function. Genes 2026, 17(2): art. no 228 (1-16) (10.3390/genes17020228).
37. Slavova-Kazakova, Adriana; Janiak, Michał Adam ; Mihova, Teodora; Aleksieva, Katerina; Karamać, Magdalena ; Amarowicz, Ryszard . Plant oils as alternative solvents for valorization of fruit by-products. Comptes Rendus de l’Academie Bulgare des Sciences 2026, 79(1): 9-17 (10.7546/CRABS.2026.01.02).
38. Szymańska, Magdalena ; Blitek, Agnieszka ; Myszczyński, Kamil . Expression, regulation, and multifaceted molecular and biological functions of sirtuin 6 in the porcine endometrium during early pregnancy. Cell Communication and Signaling 2026, 24: art. no 158 (1-24) (10.1186/s12964-026-02699-1).
39. Velleuer, Eunike; Carlberg, Carsten . Fanconi anaemia as a human model of accelerated epigenetic and immune ageing. Ageing Research Reviews 2026, 115: art. no 103038 (1-10) (10.1016/j.arr.2026.103038).
40. Wójtowicz, Anna ; Sadowska, Agnieszka ; Myszczyński, Kamil ; Molcan, Tomasz ; Kaczmarek, Monika M. ; Szóstek-Mioduchowska, Anna Z. . Interleukin-4 changes the transcriptome, ECM-associated components and function of mare endometrial fibroblast: insights from healthy and fibrotic cells. Cell and Tissue Research 2026, 403(2): art. no 25 (1-21) (10.1007/s00441-026-04049-6).
41. Zieliński, Wiktor ; Grabowska, Iwona . Electrochemical biosensors as emerging alternatives to conventional detection of pathogens and antibiotic-resistance determinants. Talanta 2026, 301: art. no 129323 (10.1016/j.talanta.2025.129323).

Czytaj więcej

Czytaj więcej