- Immunoenzymatyczne (ELISA) i immunoizotopowe (RIA) oznaczanie stężeń hormonów:
- hormonów białkowych (LH, PRL) i receptorów LH/hCG z użyciem preparatów znakowanych jodem (J-125)
- wykonywanie jodowań hormonów białkowych (LH, PRL) i cytokin (IL-1β, IL-6, TNF-α),
- hormonów steroidowych (P4, A4, T, E1, E2, kortyzol),
- prostaglandyn (PGE2, PGF2α) oraz metabolitu PGF2α – PGFM
- oksytocyny i endoteliny przy zastosowaniu hormonów znakowanych peroksydazą chrzanową (HRP) lub biotyną.
- Analiza parametrów krytycznych i gazometrii krwi:
Analiza parametrów gazometrii, elektrolitów i oksymetrii przy zastosowaniu analizatora parametrów krytycznych RAPIDpoint 405 (SIEMENS):
- gazometria: pH, pCO2, pO2,
- elektrolity: NA+, K+, Ca++, Cl-,
- glukoza, HCT,
- oksymetria: sO2, FO2Hb, FCOHb, FHHb, FMetHb, THb,
wraz z wieloma wyliczanymi parametrami pochodnymi.
-
Morfometryczna analiza krwi:
- dwutorowy pomiar leukocytów w dwóch niezależnych kanałach
- podstawowe i rozszerzone badania morfologiczne krwi bydła, kozy, owcy, konia, świni, kota, psa, królika, świnki morskiej, szczura oraz myszy, przy zastosowaniu analizatora hematologicznego ADVIA 2120i (SIEMENS).
Wymagana objętość próbki krwi do badań wynosi 157 µl.
-
Immunochemiczno–chemiluminescencyjna analiza krwi przy zastosowaniu analizatora immunochemicznego IMMULITE®1000 (SIEMENS):
- analiza stężeń hormonów nadnerczy/przysadki, płciowych (np. P4, T, E2, kortyzol),
- analizy z zakresu fizjologii tarczycy,
- analizy stężeń czynników wzrostu,
- analiza markerów stanu zapalnego (IL-1β, TNF-α, IL-10, LBP),
- analiza wskaźników alergii, anemii, cukrzycy,
- analiza markerów kardiologicznych, chorób zakaźnych, nowotworowych,
- stężeń leków
Materiałem do analiz jest surowica, osocze, medium hodowlane.
-
Analiza specyficznych immunoglobulin E przy zastosowaniu aparatu ImmunoCAP 100:
- Phadiatop – test przesiewowy różnicujący pacjentów atopowych od nieatopowych,
- całkowita IgE,
- całkowita IgE (niski poziom) – dla małych dzieci,
- specyficzne IgE – ponad 500 alergenów pojedynczych oraz 70 mieszanek,
- białko eozynofilowe ECP – monitorowanie leczenia astmy,
- tryptaza – monitorowanie stanu anafilaksji,
- gliadyny IgA i IgG – nietolerancja pokarmowa u dzieci,
- specyficzne IgA w odniesieniu do poszczególnych frakcji mleka,
- specyficzne IgG oraz IgG4,
- przeciwciała przeciwtarczycowe: anty-TPO, anty-TG,
- ponad 22 parametry z zakresu chorób autoimmunologicznych w klasie IgG, IgA,
W celu wykonania analizy niezbędne jest 40 µl surowicy pacjenta.
-
Jakościowe oznaczania in vitro ludzkich przeciwciał klasy IgG oraz IgE z zastosowaniem aparatu Euroimmun:
- Metoda immunoblottingu do oceny swoistych przeciwciał klasy IgE skierowanych przeciwko alergenom w surowicy pacjenta,
- Dostępne panele zawierające kombinacje alergenów po 20 różnych na jednym pasku testowym (wziewny, pediatryczny wziewny, pokarmowy, atopowy), dwa dla jadów owadów, oraz „Profil pediatryczny” zawierający 27 najpopularniejszych alergenów m.in.: spośród alergenów pokarmowych białko i żółtko jaja, białka mleka, mąka pszenna, ryż, soja, owoce i warzywa, a spośród wziewnych: pyłki traw i drzew, alergeny roztoczy i sierści zwierząt.
Do wykonania analizy niezbędne jest 100 µl surowicy pacjenta.
- Wykrywanie białek czynnościowych (cytokiny, białka efektorowe, receptory, markery powierzchniowe lub przeciwciała) wydzielanych przez pojedyncze komórki przy zastosowaniu zestawu ELISpot (Enzyme-Linked ImmunoSpot Assay)
PL
Wykaz aparatury
- Stanowisko robocze do immunoenzymatycznej analizy stężeń hormonów (ELISA) składający się z:
- czytnika do mikropłytek ELISA (KHB)
- spektrofotometru do mikropłytek i kuwet – Multiscan Spectrum (Thermo Scientific)
- płuczki automatycznej do mikropłytek
- inkubatora płytkowego (Heraeus)
- Stanowisko robocze do immunoizotopowej analizy stężeń hormonów (RIA)
składające się z:- Licznika promieniowania Beta
- Licznika promieniowania Gamma
- Wyciągu radiochemiczny
- Wirówki Beckman
- Mikrolaba Hamilton
- Wagi laboratoryjna
- Ultrazamrażarki –85° C
- Analizator chemiluminescencyjny IMMULITE® 1000
- menu analizatora liczy ponad testów 90
- możliwość jednoczesnego oznaczenia 5 różnych parametrów w jednej próbie
- automatyczne rozcieńczenia dla wybranych testów
- wydajność 129 testów na godzinę
- możliwość pracy w trybie standardowym i „Turbo”
- ImmunoCAP 100
- pełna automatyka procesu łącznie z automatycznym pobraniem próbki pacjenta oraz wydrukiem wyników
- maksymalna pojemność karuzeli: do 48 miejsc
- maksymalny czas wykonania oznaczenia: 2 godz. 40 min
- automatyczne rozcieńczanie próbki
- jednoczesne wykonywanie kilku metod z 1 próbki surowicy krwi
- Euroimmun – Testy jakościowe oznaczania in vitro ludzkich przeciwciał klasy IgG przeciwko wybranym antygenom (choroby z autoagresji i infekcje), oraz IgE – przeciwko alergenom. Zestaw zawiera paski testowe z naniesionymi w postaci linii oczyszczonymi antygenami oraz zestaw odczynników. Odczyt i komputerowa obróbka wyników przy pomocy programu EUROLineScan.
- ELISpot (Enzyme-Linked ImmunoSpot Assay)
- EliScan – skaner do odczytu spotów
- Eli.Analyse – program do analizy obrazu posiadający możliwości: algorytmy automatycznej korekcji obrazu, algorytmy detekcji zanieczyszczeń, sortowanie plamek (komórek) według wielkości, sortowanie plamek według barwy (Dual Elispot – zastosowanie 2 systemów barwiących pozwala oznaczać 2 różne białka wydzielane przez komórki w jednej hodowli), analiza statystyczna grup obserwacji, analiza serii płytek bez ingerencji z zewnątrz.
Oferowane metody i analizy
- analizy cytometryczne (m.in. ocena żywotności, płynności błon komórkowych, potencjału mitochondrialnego oraz obecności reaktywnych form tlenu (ROS), cytometryczna charakterystyka pęcherzyków zewnątrzkomórkowych),
- analiza parametrów ruchliwości plemników,
- analiza koncentracji nasienia,
- kriokonserwacja nasienia,
- prowadzenie hodowli zarodków in vitro,
- bankowanie i przechowywanie komórek i tkanek.
Wykaz aparatury
Strefa analizy i kriokonserwacji nasienia:
- cytometry przepływowe (Muse, Guava oraz FlowSight) – urządzenia służące do analizy jakości plemników, m.in. oceny żywotności, płynności błon komórkowych, potencjału mitochondrialnego oraz obecności reaktywnych form tlenu (ROS). Ponadto, pozwalają one scharakteryzować pęcherzyki zewnątrzkomórkowe,
- system CASA (Computer Assisted Sperm Analysis) – system komputerowy umożliwiający precyzyjny pomiar parametrów ruchliwości plemników, wykorzystywany m.in. do oceny wpływu procedur przechowywania i kriokonserwacji na jakość nasienia,
- Nucleocounter – umożliwiający szybki i dokładny pomiar koncentracji plemników oraz odsetka komórek żywych i martwych,
- mikroosmometr – urządzenie do pomiaru osmolalności płynów, zarówno biologicznych (plazma nasienia, plazma krwi) jak i chemicznych,
- system IceCube 4s – zaawansowany system do programowanej, komputerowo sterowanej kriokonserwacji nasienia,
- drukarka Easy Coder – urządzenie do nanoszenia identyfikacyjnych danych (np. nazw gatunków, osobników, dat) na słomki, pozwalające na pełną kontrolę identyfikowalności próbek,
- automatyczna maszyna MPP Quattro – system do napełniania oraz zamykania słomek do kriokonserwacji,
- zgrzewarka do słomek – urządzenia do ręcznego zgrzewania słomek, używane jako alternatywa dla systemu MPP Quattro.
Strefa analizy oocytów i hodowli zarodków in vitro
- mikroskop odwrócony Zeiss z systemem fluorescencji oraz mikromanipulatorami, wykorzystywany do analizy przeżyciowej oocytów i zarodków, z dedykowanym oprogramowaniem MicroImage umożliwiającym dokumentację i analizę parametrów morfologicznych,
- mikroskop stereoskopowy Zeiss do selekcji, klasyfikacji i izolacji komórek jajowych,
- mikroskop odwrócony Olympus CKX41 do oceny jakości i stadium rozwojowego gamet oraz zarodków,
- komory laminarne oraz inkubatory trójgazowe (CO₂, O₂, N₂) umożliwiające prowadzenie długoterminowej hodowli zarodków ssaków w precyzyjnie kontrolowanych warunkach środowiskowych,
- system do aspiracji oocytów z pęcherzyków jajnikowych,
- cyfrowy system do monitorowania rozwoju zarodków w czasie rzeczywistym Primo Vision, umożliwiający prowadzenie badań nad embriogenezą i dynamiką podziałów komórkowych,
- zestaw narzędzi do samodzielnej produkcji mikrokapilar, w tym wyciągarka, mikrokuźnia i mikroszlifierka – niezbędne w procedurach mikromanipulacyjnych takich jak ICSI, transfer jądra komórkowego czy mikroiniekcja materiału genetycznego.
Oferowane metody i analizy
- Elektroforeza dwukierunkowa (2D) – wyznaczenie punktu izoelektrycznego i masy, cząsteczkowej białek, analiza profili białkowych;
- Izolacja białek i peptydów przy użyciu FPLC, określenie podstawowych właściwości fizykochemicznych białek;
- Pomiar koncentracji plemników;
- Analizy kinetyczne (określenie stężenia enzymów i inhibitorów, wyznaczenie stałych asocjacji dla oddziaływania inhibitor – proteinaza);
- Elektroelucja białek z żelu poliakrylamidowego.
Wykaz aparatury
- Zintegrowany system do elektroforezy dwukierunkowej (2D) z wyposażeniem:
- System do elektroforezy dwukierunkowej (IPGphor 3 IEF System – pierwszy kierunek; Ethan DALTsix Large Vertical System – drugi kierunek,
- System do analizy i dokumentacji żeli (ImageScanner III),
- System umożliwiający wycinanie spotów białkowych z żeli 2D oraz ich transfer na mikropłytki (Etttan spot picker),
- System umożliwiający trawienie białek ze spotów wyciętych z żelu 2D (Ettan Digester),
- System przeznaczony do nanoszenia próbek białka na matrycę MALDI MS (Ettan Potter),
- System do liofilizacji z wyposażeniem;
- VersaFluor Fluorometr;
- System wysokosprawnej chromatografii cieczowej z wyposażeniem (AKTApurifier);
- Zamrażarka pionowa niskotemperaturowa;
- Spektrofotometr (Beckman DU800) z wyposażeniem;
- Sonikator ultradźwiękowy (Sonics vibra cell);
- Aparat do elektroelucji białek z żelu z wyposażeniem (Whole Gel Eluter with Harvesting Box).
Zasady postępowania konkursowego przy zatrudnianiu na stanowisku profesora nadzwyczajnego w Instytucie Rozrodu Zwierząt i Badań Żywności PAN w Olsztynie
§ 1.
- Na stanowisku profesora nadzwyczajnego (PAN) zatrudnia się osobę, która posiada co najmniej stopień naukowy doktora habilitowanego, a ponadto:
- jest lub była promotorem co najmniej jednego przewodu doktorskiego,
- od czasu uzyskania stopnia doktora habilitowanego legitymuje się istotnymi osiągnięciami naukowymi, w tym oryginalnymi pracami naukowymi opublikowanymi w czasopismach ujętych w bazie Web of Sciences (WoS),
- kierowała lub kieruje co najmniej trzema projektami badawczymi finansowanymi ze źródeł zewnętrznych,
- jest aktywnym popularyzatorem nauki i uczestniczy w życiu naukowym i organizacyjnym środowiska akademickiego i zawodowego.
- Dyrektor Instytutu w porozumieniu z kierownikiem jednostki organizacyjnej, w której ma być zatrudniony profesor nadzwyczajny, może określić dodatkowe wymagania niż określone w ust. 1. oraz dodatkowe warunki konkursu, jakie musi spełnić osoba kandydująca.
- Z inicjatywą utworzenia stanowiska profesora nadzwyczajnego może wystąpić zastępca dyrektora ds. naukowych lub kierownik jednostki organizacyjnej Instytutu.
- Postępowanie kwalifikacyjne przebiega według następującej procedury:
- kierownik jednostki organizacyjnej składa wniosek do dyrektora Instytutu w sprawie:
- utworzenia stanowiska profesora nadzwyczajnego, pozytywnie zaopiniowany przez
- dyrektora Instytutu ds. naukowych,
- ogłoszenie konkursu przez dyrektora Instytutu,
- powołanie komisji konkursowej przez dyrektora Instytutu. Zasady pracy komisji określa § 2,
- przeprowadzenie i rozstrzygnięcie konkursu przez komisję,
- decyzja dyrektora Instytutu.
- kierownik jednostki organizacyjnej składa wniosek do dyrektora Instytutu w sprawie:
§ 2.
Zasady pracy Komisji:
- W skład komisji wchodzi od pięciu do siedmiu osób:
- zastępca dyrektora Instytutu ds. naukowych,
- przewodniczący Komisji Rady Naukowej Instytutu ds. nauki, rozwoju kadry i oceny pracowników naukowych,
- kierownik jednostki organizacyjnej wnioskujący o ustanowienie stanowiska profesora nadzwyczajnego,
- co najmniej jeden profesor tytularny zatrudniony w Instytucie, specjalista w dziedzinie naukowej lub pokrewnej, w której ma być ustanowione stanowisko profesora nadzwyczajnego,
- co najmniej jeden profesor tytularny niezatrudniony w Instytucie, specjalista w dziedzinie, w której ma być ustanowione stanowisko profesora nadzwyczajnego.
- Obradom i pracom komisji przewodniczy zastępca dyrektora ds. naukowych.
- Po zapoznaniu się z dokumentacją złożoną przez osoby kandydujące komisja wstępnie ocenia ich dorobek i decyduje o dalszych etapach postępowania. W przypadku pozytywnej oceny, komisja wybiera jeden z trzech 25 min wykładów monograficznych i ustala termin zebrania naukowego Instytutu, na którym osoba kandydująca przedstawia wykład.
- Po wykładzie monograficznym komisja wyznacza termin rozmowy kwalifikacyjnej dotyczącej planów badawczych, dydaktycznych i organizacyjnych osoby kandydującej oraz opiniuje kandydaturę w trybie głosowania tajnego.
- Komisja sporządza protokół i przedstawia wraz z wnioskami dyrektorowi Instytutu.
- Dyrektor podejmuje decyzję o zatrudnieniu.
§ 3.
Przystępując do konkursu na stanowisko profesora nadzwyczajnego, osoba kandydująca składa w sekretariacie Instytutu następujące dokumenty w wersji drukowanej i na nośniku elektronicznym:
- podanie,
- odpis dokumentu potwierdzającego nadanie stopnia naukowego doktora habilitowanego lub tytułu naukowego profesora,
- zestawienie dorobku naukowego (preferowana forma – Tabela),
- wykaz publikacji (za okres przed i po uzyskaniu stopnia naukowego doktora habilitowanego),
- życiorys wraz autoreferatem naukowym oraz listą indywidualnych osiągnięć naukowych,
- plany badawcze krótkoterminowe (3 lata) oraz zarys planów badawczych długoterminowych (10 lat),
- tytuły i konspekt 3 wykładów monograficznych spełniających wymogi wykładu dla studentów III stopnia kształcenia wyższego (Studia Doktoranckie) w zakresie dziedziny określonej w konkursie.
Osoby spoza Instytutu składają dodatkowo:
- kwestionariusz osobowy z 2 zdjęciami;
- opinię dyrektora naczelnego lub rektora (albo przełożonego) z ostatniego miejsca pracy.
§ 4.
Informacja o osiągnięciach naukowych, dydaktycznych i organizacyjnych (Autoreferat) osoby kandydującej na stanowisko profesora nadzwyczajnego (o objętości do 15 stron) powinna zawierać:
- Ogólne informacje:
- imię i nazwisko,
- tytuł i stopień naukowy,
- data i miejsce urodzenia,
- rok ukończenia studiów wyższych, uczelnia,
- rok uzyskania stopnia naukowego doktora, instytucja naukowa,
- rok uzyskania stopnia naukowego doktora habilitowanego,
- rok uzyskania tytułu naukowego profesora (gdy zachodzi taka okoliczność),
- data zatrudnienia w jednostce naukowej, nazwa jednostki organizacyjnej,
- data zatrudnienia na stanowisku adiunkta.
- Syntetyczny opis dotychczasowych prac badawczych i najważniejszych indywidualnych osiągnięć naukowych.
- Syntetyczny opis planów badawczych: krótkoterminowych (3 lata) i zarys planów długoterminowych (10 lat).
- Działalność naukowo-badawcza:
- liczba publikacji, w tym po uzyskaniu stopnia naukowego doktora habilitowanego,
- liczba cytowań bez autocytowań wg. WoS oraz indeks Hirscha bez autocytowań wg bazy SCOPUS,
- wykaz najważniejszych prac, po uzyskaniu stopnia doktora habilitowanego,
- wykaz projektów badawczych, finansowanych ze źródeł zewnętrznych, w których osoba kandydująca pełniła bądź pełni funkcję kierownika,
- działalność w zakresie upowszechniania osiągnięć naukowych, współpraca z regionem, itp. (maksymalnie do 5 pozycji),
- współpraca naukowa z zagranicą (forma, zakres, osiągnięcia),
- liczba opracowanych recenzji prac naukowych dla czasopism naukowych.
- Wyjazdy zagraniczne (kraj, instytucja, cel wyjazdu, okres trwania):
- staże naukowe, wykłady, projekty, misje,
- czynny udział w konferencjach – dane dotyczące wykładów na zaproszenie, referatów i doniesień ustnych, członkostwa w radach programowych i organizacyjnych, przewodniczenia sesji, itp..
- Działalność dydaktyczna – poprzednie i aktualnie prowadzone wykłady, ćwiczenia, seminaria, w tym w języku obcym.
- Osiągnięcia w kształceniu kadry naukowej:
- wykaz wypromowanych magistrów, doktorów lub otwartych przewodów doktorskich,
- liczba opracowanych recenzji prac doktorskich i habilitacyjnych.
- Działalność organizacyjna:
- organizacja konferencji naukowych, sympozjów,
- udział w pracach organizacyjnych w miejscu zatrudnienia,
- udział w kolegiach redakcyjnych polskich lub zagranicznych czasopism naukowych,
- funkcje pełnione z wyboru w towarzystwach i organizacjach naukowych – krajowych i zagranicznych,
- udział w radach naukowych,
- inne formy działalności organizacyjnej.
- Nagrody i wyróżnienia o randze krajowej i międzynarodowej (rok otrzymania).
- Inne ważne informacje nieuwzględnione w ust. 2–9.
Regionalne Centrum Badań i Transferu Wiedzy „ŻYWNOŚĆ DLA ZDROWIA” – Etap II
Inwestycja w aparaturę badawczą tworzącą powiązania kooperacyjne pomiędzy jednostką naukowo-badawczą a przedsiębiorstwami – etap II” będzie realizowany przez Instytut Rozrodu Zwierząt i Badań Żywności PAN w Olsztynie w terminie od 19.01.2012 do 31.12.2013 roku.
Celem projektu jest rozbudowa zaplecza badawczego, będąca kontynuacją działań rozpoczętych w ramach I etapu i umożliwiająca prowadzenie zaawansowanych jakościowo badań naukowo-wdrożeniowych dla przemysłu, co przyczyni się w istotny sposób do rozwoju sektora produkcji żywności wysokiej jakości w regionie Warmii i Mazur i sprzyjać będzie profilaktyce chorób cywilizacyjnych, takich jak: alergie pokarmowe, otyłość czy cukrzyca.
Realizacja projektu zakłada dalszą modernizację trzech wysoko-specjalistycznych laboratoriów: metabolomiki, zwierzętarni i mikrobiologii, co umożliwi świadczenie nowych usług B+R i tworzenie powiązań kooperacyjnych pomiędzy Instytutem, a przedsiębiorstwami branży rolno-spożywczej regionu, opartych na dyfuzji innowacji.
W ramach Projektu planowany jest zakup 19 nowoczesnych jednostek wyposażenia badawczo-rozwojowego, m.in.:
Spektrometr masowy z analizatorem typu potrójny kwadrupol, analizatorem czasu przelotu i systemem UPLC – umożliwiający badania pełnego spektrum metabolitów (metabolom) obecnych w dowolnym układzie (w żywności, organizmie, tkance czy komórce roślinnej, zwierzęcej lub ludzkiej). Zakup tego systemu pozwoli m. in. na:
- prowadzenie badań ukierunkowanych na wyznaczenie biomarkerów spożycia żywności pochodzenia roślinnego oraz zdrowia i stanów chorobowych człowieka, co ma kapitalne znaczenie dla profilaktyki chorób cywilizacyjnych;
- możliwość określenia zmian składników surowca w trakcie jego przetwarzania w procesie technologicznym, co zagwarantuje otrzymanie produktu o pożądanym z punktu widzenia zdrowia konsumenta składzie i właściwościach.
Laboratorium Mikrobiologiczne zostanie wyposażone w stanowisko do pracy z mikroorganizmami w kontrolowanej atmosferze gazów (N2, CO2 i H2), które umożliwi pracę z drobnoustrojami ściśle beztlenowymi i jest jedynym uznanym rozwiązaniem technicznym niezbędnym do kompleksowych badań interakcji mikroflory jelitowej i żywności. Planowane wyposażenie umożliwi prowadzenie zaawansowanych badań w zakresie profilowania populacji bakterii przewodu pokarmowego. Możliwość pracy w warunkach ściśle beztlenowych stworzy w Instytucie warunki do prowadzenia badań umożliwiających równoczesne monitorowanie profilu wzrostu i aktywności metabolicznej szerokiej gamy mikroorganizmów tlenowych, mikroaerofilnych i ściśle beztlenowych, co jest rozwiązaniem unikatowym w skali regionu, a nawet kraju.
Rozbudowanie istniejącego w Instytucie systemu elektroforetycznego rozdziału produktu PCR w gradiencie denaturującympozwoli na rozszerzenie oferowanych już usług bazujących na metodzie łańcuchowej reakcji polimerazy i następującej po niej elektroforezy w gradiencie czynników denaturujących (PCR-DGGE). Jako uznana metoda służąca do jakościowego profilowania złożonych populacji bakteryjnych (np. przewodu pokarmowego, produktów spożywczych, gleby i ścieków) może być wykorzystana w badaniach prowadzonych dla ośrodków przemysłowych, m.in. do:
- monitorowania dynamiki zmian w składzie bakteryjnym w czasie procesu technologicznego lub przechowywania (istotne dla oceny jakości, stabilności i trwałości produktu);
- oceny bioróżnorodności mieszanych populacji bakteryjnych, np. w naturalnie fermentowanych produktach;
- oceny wpływu suplementacji produktu fermentowanego wybranym szczepem bakteryjnym (ważne dla określenia równowagi i stabilności mikrobiologicznej nowych produktów);
- oceny wpływu różnych czynników (np. składników diety, dodatków do pasz, suplementacji probiotykami lub probiotykami) na profil jakościowy bakterii jelitowych człowieka i zwierząt hodowlanych.
Nowoczesne elementy wyposażenia Zwierzętarni – dadzą możliwość prowadzenia testów biologicznych spełniających najwyższe standardy jakościowe i jednocześnie pozwolą utrzymać wysoki reżim higieniczny. Proponowane systemy zapewnią jednorodne, powtarzalne i wolne od zanieczyszczeń środowisko bytowania dla zwierząt doświadczalnych, przez co możliwe będzie wyeliminowanie oddziaływania wpływu czynników zewnętrznych. Nowoczesne; wyposażenie przyczyni się do poprawy efektywności i jakość wykonywanych testów żywieniowych, immunologicznych i innych analiz, które dają m.in. możliwość:
- określenia wartości współczynników strawności i/lub retencji składników pokarmowych;
- wyznaczenia aktywność enzymów występujących w treści pokarmowej;
- określenia składu, równowagi i aktywności fizjologicznej mikroflory jelitowej;
- opisania stan i aktywność fizjologicznej jelita;
- badania wpływu składników pokarmowych (w tym alergenów) na układ immunologiczny.

